Вспышка синегнойной инфекции среди новорожденных в отделении реанимации и интенсивной терапии

06.06.2010

Таблица 4. Чувствительность P. аeruginosa к дезинфицирующим средствам

Объекты выделения Кол-во изученных штаммов Количество штаммов, у которых выявлена степень пленкообразования: Количество штаммов, не образующих пленки
высокая (первая) умеренная (вторая)
абс. % абс. % абс. %
Новорожденные 26 16 61,5 ± 9,5 6 23,1 ± 8,3 4 15,4 ± 7,1
Внешняя среда 10 6 60 ± 15,5 4 40 ± 15,5 0 0
Всего 36 22 61,1 ± 8,1 10 27,8 ± 7,5 4 11,1 ± 5,2

Таблица 5. Частота и степень формирования биопленок у P. аeruginosa

Основная масса штаммов P. аeruginosa -61,1 ± 8,1% - обладала высокой степенью плен-кообразования (табл. 5). Умеренной способностью образовывать пленки характеризовалось 27,8 ± 7,5% выделенных культур. Доля непленкообразующих штаммов составила 11,1 ± 5,2%. Гетерогенность популяции синегнойной палочки по признаку пленкообразования с преобладанием изолятов с высоко выраженной степенью этого признака была характерна для штаммов, как выделенных от новорожденных, так и изолированных из внешней среды. Полученные данные указывают на то, что большинство возбудителей отличались значительной вирулентностью, что присуще госпитальному штамму.

Выводы

Таким образом, в ОРИТ новорожденных возникла вспышка синегнойной инфекции с количеством пострадавших 37 человек. У части детей (21,6 ± 6,8%) синегнойная инфекция сопровождалась развитием пневмонии. Пусковым фактором риска расп ростран ения синегнойной инфекции стала процедура ИВЛ, сопровождавшаяся отсасы ванием слизи с пом ощью аппарата Basic 036, аспирационные трубки которого были контаминированы P. aeruginosa в результате их неправильной обработки и нарушения кратности использования электроотса-сывателя. В момент соединения аспирационной трубки электроотсасывателя Basic 036 с одноразовым катетером, с помощью которого производилось отсасывание слизи, происходила его контаминация за счет рук персонала. Выделенные во время вспышки штаммы P. aeruginosa имели близкие профили генетического типирования, отличались резистентностью к антибиотикам цефа-лоспоринового ряда, устойчивостью к рабочим растворам дезинфицирующих средств и высокой степенью пленкообразования.

Литература

  1. Касихина С.А., Милева О.И., Морозова Е.Н., Потапова О.В. Госпитальные инфекции в неонатологии и принципы организации профилактических мероприятий в проблемных отделениях // Педиатрия. 2004. № 3. С. 66 - 69.
  2. Методы испытаний дезинфекционных средств для оценки их безопасности и эффективности: Метод. указ. - М., 1998.
  3. Миронов П.И., Мардганиева Э.А. Вентилятор-ассоциированная пневмония у детей // Вестник интенсивной терапии. 2004. № 2. С. 23 - 29.
  4. О мерах по дальнейшему совершенствованию реанимационной помощи детям в Российской Федерации: Приказ МЗ РФ № 624 от 30.12.2003 г.
  5. Определение чувствительности микроорганизмов к антибактериальным препаратам: Метод. указ. МУК 4.2.1890-04.
  6. Сергиенко В.И., Бондарева И.Б. Математическая статистика в клинических исследованиях. - М., 2006. - 304 с.
  7. Соломенный А.П., Максимов А.Ю., Мочалова Т.И. ПЦР-генотипирование госпитальных изолятов Acinetobacter // Журн. микробиол. 2004. № 6. С. 26 - 30.
  8. Шагинян И.А. Роль и место молекулярно-генетических методов в эпидемиологическом анализе внутрибольничных инфекций // Клин. микробиол. и антимикроб. химиотер. 2000. Т. 2. № 3. С. 82 - 95.
  9. Шагинян И.А. Неферментирующие грамотрицательные бактерии в этиологии внутрибольничных инфекций: клинические, микробиологические и эпидемиологические особенности // Клин. микробиол. и антимикроб. химиотер. 2005. Т. 7. № 3. С. 271 - 285.
  10. O'Toole G.F., Kaplan H.B., Kolter R. Biofilm formation as micribial development // Ann. Rev. Microbiol. 2000. № 54. С. 49 - 79.