epidemiologyЭпидемиология и ВакцинопрофилактикаEpidemiology and Vaccinal Prevention2073-30462619-0494«Numicom» LLC10.31631/2073-3046-2024-23-3-27-37epidemiology-2011Research ArticleОРИГИНАЛЬНЫЕ СТАТЬИORIGINAL ARTICLESАнтибиотикочувствительность выделенных на территории России штаммов Bordetella pertussis к эритромицину и азитромицинуAntimicrobial Susceptibility Testing to Erythromycin and Azithromycin of Clinical Isolates of Bordetella pertussis Circulating in Russiahttps://orcid.org/0000-0002-6914-3531ПименоваА. С.PimenovaA. S.

Алена Сергеевна Пименова – к. м. н., ведущий научный сотрудник лаборатории диагностики дифтерийной и коклюшной инфекций

Москва

+7 (499) 747-64-84

Alena S. Pimenova – Cand. Sci. (Med.), leading researcher of laboratory of diagnostic of diphtheria and pertussis infections

+7 (499) 747-64-84

alenaa_85@mail.ruhttps://orcid.org/0000-0001-6247-6176ГадуаН. Т.GaduaN. T.

Натия Торникеевна Гадуа – к. м. н., ведущий научный сотрудник лаборатории диагностики дифтерийной и коклюшной инфекций

Москва

+7 (499) 747-64-84

Natiya T. Gadua – Cand. Sci. (Med.), leading researcher of laboratory of diagnostic of diphtheria and pertussis infections

+7 (499) 747-64-84

8nati8@mail.ruhttps://orcid.org/0000-0003-2997-942XАндриевскаяИ. Ю.AndrievskayaI. Yu.

Ирина Юрьевна Андриевская – научный сотрудник лаборатории диагностики дифтерийной и коклюшной инфекций

Москва

+7 (499) 747-64-84

Irina Yu. Andrievskaya – researcher of laboratory of diagnostic of diphtheria and pertussis infections

+7 (499) 747-64-84

andrievskaya.iri@mail.ruhttps://orcid.org/0000-0001-6316-5046БорисоваО. Ю.BorisovaO. Yu.

Ольга Юрьевна Борисова – д. м. н., профессор, руководитель лаборатории диагностики дифтерийной и коклюшной инфекций

125212, Москва, ул. Адмирала Макарова, д. 10

+7 (499) 747-64-84

+7 (916) 147-19-60

факс +7 (495) 452-18-30

Ol’ga Yu. Borisova – Dr. Sci. (Med.), professor, head of laboratory of diagnostic of diphtheria and pertussis infections

10, Admiral Makarov str., Moscow, 125212

+7 (499) 747-64-84

+7 (916) 147-19-60

fax: +7 (495) 452-18-30

olgborisova@mail.ruhttps://orcid.org/0000-0001-6065-2623ПетроваМ. С.PetrovaM. S.

Марина Семеновна Петрова – к. м. н., ведущий научный сотрудник клинического отдела

Москва

+7 (495) 459-18-16

Marina S. Petrova – Cand. Sci. (Med.), leading researcher of the clinical department

+7 (495) 459-18-16

gabrich@mail.ruhttps://orcid.org/0000-0003-4425-8428БорисоваА. Б.BorisovaA. B.

Анастасия Борисовна Борисова – к. м. н., младший научный сотрудник клинического отдела

Москва

+7 (917) 592-13-13

Anastasiya B. Borisova – Cand. Sci. (Med.), junior researcher of the clinical department

+7 (917) 592-13-13

anastasiaboris93@mail.ruhttps://orcid.org/0000-0001-6497-1795АфанасьевС. С.Afanas'evS. S.

Станислав Степанович Афанасьев – д. м. н., главный научный сотрудник

Москва

+7 (903) 667-20-68

Stanislav S. Afanasiev – Dr. Sci. (Med.), chief researcher

+7 (903) 667-20-68

afanasievss409.4@bk.ruhttps://orcid.org/0000-0003-4099-2967ПодопригораИ. В.PodoprigoraI. V.

Ирина Викторовна Подопригора – к. м. н., доцент, заведующая кафедрой микробиологии им. В. С. Киктенко

Москва

+7 (916) 638-06-35

Irina V. Podoprigora – Cand. Sci. (Med.), docent, head of the Department of Microbiology named after V.S. Kiktenko

+7 (916) 638-06-35

podoprigora-iv@rudn.ruhttps://orcid.org/0000-0002-5860-4152АфанасьевМ. С.Afanas'evM. S.

Максим Станиславович Афанасьев – д. м. н., профессор кафедры клинической аллергологии и иммунологии

Москва

+7 (916) 685-52-38

Maksim S. Afanas’ev – Dr. Sci. (Med.), professor of the department of clinical allergology and immunology

+7 (916) 685-52-38

mafa78@inbox.ruМосквинаТ. И.MoskvinaT. I.

Татьяна Ивановна Москвина – заведующая микробиологической лабораторией

г. Челябинск

+7 (351) 264-67-80

Tat’yana I. Moskvina – head of microbiological laboratory

+7 (351) 264-67-80

microb@chel.surnet.ruВоробьеваГ. В.Vorob'evaG. V.

Галина Васильевна Воробьева – заведующая бактериологической лабораторией

г. Каменск­Уральский

+7 (3439) 340-325

Galina V. Vorob’eva – head of bacteriological laboratory

+7 (3439) 340-325

kudbpublic@mis66.ruДегтяреваИ. М.DegtyarevaI. M.

Ирина Марковна Дегтярева – заведующая микробиологической лабораторией

г. Воронеж

+7 (473) 263-85-24

Irina M. Degtyareva – head of microbiological laboratory

+7 (473) 263-85-24

dim257@mail.ruТимиркинаО. В.TimirkinaO. V.

Ольга Владимировна Тимиркина – заведующая микробиологической лаборатори

г. Ульяновск

+7 (8422) 40-51-14

Ol’ga V. Timirkina – head of microbiological laboratory

+7 (8422) 40-51-14

info@73fguz.ruЛукьянцеваС. А.Luk'yancevaS. A.

Светлана Альбертовна Лукьянцева – заведующая бактериологической лабораторией

г. Пермь

+7 (342) 239-35-49

Svetlana A. Luk’yanceva – head of bacteriological laboratory

+7 (342) 239-35-49

cgepo@mail.ruТригорловаТ. Н.TrigorlovaT. N.

Татьяна Николаевна Тригорлова – заведующая диагностическим отделением

г. Хабаровск

+7 (4212) 32-77-57

Tat’yana N. Trigorlova – head of the diagnostic department

+7 (4212) 32-77-57

fbuz@27.khv.ruФБУН МНИИЭМ им. Г. Н. Габричевского РоспотребнадзораРоссияG.N. Gabrichevsky Research Institute of Epidemiology and MicrobiologyRussian FederationФБУН МНИИЭМ им. Г. Н. Габричевского Роспотребнадзора; ФГАОУ ВО РУДН им. Патриса ЛумумбыРоссияG.N. Gabrichevsky Research Institute of Epidemiology and Microbiology; Peoples’ Friendship University of Russia (RUDN University)Russian FederationФГАОУ ВО РУДН им. Патриса ЛумумбыРоссияPeoples’ Friendship University of Russia (RUDN University)Russian FederationФГАОУ ВО Первый МГМУ им. И.М. Сеченова Минздрава России (Сеченовский Университет)РоссияSechenov UniversityRussian FederationФБУЗ «Центр гигиены и эпидемиологии в Челябинской области»РоссияCenter of Hygiene and Epidemiology in Chelyabinsk regionRussian FederationГАУЗ СО «ДГБ г. Каменск­Уральский»РоссияChildren's city hospital Kamensk-UralskyRussian FederationФБУЗ «Центр гигиены и эпидемиологии в Воронежской области»РоссияCenter of Hygiene and Epidemiology in Voronezh regionRussian FederationФБУЗ «Центр гигиены и эпидемиологии в Ульяновской области»РоссияCenter of Hygiene and Epidemiology in Ulyanovsk regionRussian FederationФБУЗ «Центр гигиены и эпидемиологии в Пермском крае»РоссияCenter of Hygiene and Epidemiology in Perm regionRussian FederationФБУЗ «Центр гигиены и эпидемиологии в Хабаровском крае»РоссияCenter of Hygiene and Epidemiology in Khabarovsk regionRussian Federation2024090720242332737Copyright © Пименова А.С., Гадуа Н.Т., Андриевская И.Ю., Борисова О.Ю., Петрова М.С., Борисова А.Б., Афанасьев С.С., Подопригора И.В., Афанасьев М.С., Москвина Т.И., Воробьева Г.В., Дегтярева И.М., Тимиркина О.В., Лукьянцева С.А., Тригорлова Т.Н., 20242024Пименова А.С., Гадуа Н.Т., Андриевская И.Ю., Борисова О.Ю., Петрова М.С., Борисова А.Б., Афанасьев С.С., Подопригора И.В., Афанасьев М.С., Москвина Т.И., Воробьева Г.В., Дегтярева И.М., Тимиркина О.В., Лукьянцева С.А., Тригорлова Т.Н.Pimenova A.S., Gadua N.T., Andrievskaya I.Y., Borisova O.Y., Petrova M.S., Borisova A.B., Afanas'ev S.S., Podoprigora I.V., Afanas'ev M.S., Moskvina T.I., Vorob'eva G.V., Degtyareva I.M., Timirkina O.V., Luk'yanceva S.A., Trigorlova T.N.Данная работа распространяется под лицензией Creative Commons Attribution 4.0.This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 License.https://www.epidemvac.ru/jour/article/view/2011

Актуальность. Антибактериальные препараты широко применяются для лечения и профилактики инфекций верхних и нижних дыхательных путей. Однако масштабное, длительное, а также необоснованное применение антимикробных препаратов для лечения этих инфекций привело к возникновению резистентности у большинства патогенных микроорганизмов. Цель. Изучить антибиотикочувствительность циркулирующих на территории России штаммов возбудителя коклюша к эритромицину и азитромицину. Материалы и методы. В исследование включено 165 клинических изолятов B. pertussis, выделенных с 2014 г. по 2020 г. Антибиотикочувствительность к эритромицину и азитромицину определяли двумя методами: диско-диффузионным и с помощью МИК теста. Мутацию A2047G в гене 23S rRNA у штаммов B. pertussis выявляли в ПЦР с последующим секвенированием продуктов амплификации. Результаты и обсуждение. При использовании диско-диффузионного метода было выявлено, что диаметр зоны задержки роста к эритромицину у исследуемых изолятов варьировал в пределах 25–62 мм (медиана 44 мм), а диаметр зоны задержки роста к азитромицину колебался в пределах 22–80 мм (медиана 50 мм). При этом наличие зоны задержки роста диаметром ≥ 42 мм после 7 дней инкубации свидетельствовало о чувствительности штамма к этим антибиотикам. Учитывая этот критерий, было определено, что среди изученных штаммов 57 (34,5%) оказались резистентными к эритромицину и 23 (13,9%) – к азитромицину. Далее проведено исследование по установлению МПК эритромицина и азитромицина для 57 и 23 штаммов соответственно. В группу сравнения вошло 79 изолятов, относящихся по результатам предыдущего исследования к категории чувствительных. Значение МПК, равное 0,12 мкг/мл, рассматривалось в качестве cut-off для антибиотикочувствительности штаммов. Установлено, что МПК эритромицина и МПК азитромицина для изолятов B. pertussis находились в пределах 0,01–0,001 мкг/мл (медиана 0,001 мкг/мл) и 0,01–0,0001 мкг/мл (медиана 0,0001 мкг/мл) соответственно, и, следовательно, все изученные штаммы оказались чувствительными к этим антибиотикам. Проведенные молекулярно-генетические исследования показали, что у изолятов B. pertussis, которые имели зону задержки роста диаметром < 42 мм, также отсутствовала и мутация A2047G в гене 23S rRNA. Выводы. Полученные результаты свидетельствуют о том, что необходимо определить критерии оценки антибиотикочувствительности штаммов B. pertussis к эритромицину и азитромицину с помощью диско-диффузионного метода и использовать его только в качестве скринингового метода при мониторинге возбудителей коклюша с обязательной последующей оценкой МПК антибиотиков. По итогам проведенного исследования штаммы B. рertussis, выделенные в России в 2014–2020 гг., сохраняют свою чувствительность in vitro к эритромицину и азитромицину и проявляют гомозиготный фенотип.

Relevance. Antibacterial drugs are widely used to treat and prevent infections of the upper and lower respiratory tract. The large-scale and unjustified use of antimicrobials to treat these infections has led to the emergence of resistance in most pathogens. The aim. To study antimicrobial susceptibility testing to erythromycin and azithromycin of strains of B. pertussis isolated in Russia. Materials & Methods. The research included 165 strains of B. pertussis isolated in January 2014 to June 2020. Antimicrobial susceptibility to erythromycin and azithromycin was determined by disk diffusion method and MIC test (HiMedia Laboratories Pvt. Limited, India). The A2047G mutation in the 23S rRNA gene was detected by PCR and subsequent sequencing. Results. Disk diffusion zone diameters for erythromycin in the studied strains ranged from 25 to 62 mm (median 44 mm) and disk diffusion zone diameters for azithromycin ranged from 22 to 80 mm (median 50 mm). Isolates with growth inhibition of more than 42 mm in diameter after 7 days of incubation were considered as susceptible. Among the studied strains, 57 (34.5%) were resistant to erythromycin and 23 (13.9%) to azithromycin. Then, MIC of erythromycin and MIC of azithromycin, respectively, were determined for these 57 and 23 strains using the MIC test. The comparison group included 79 isolates that were classified as sensitive to erythromycin (n = 31) and azithromycin (n=48) according to the results of the previous study. A MIC value of 0.12 μg/ml was considered as the cut-off for susceptible strains. All isolates were fully susceptible to erythromycin (MIC ≤ 0.01 μg/ml, median MIC 0.001 μg/ml) and azithromycin (MIC ≤ 0.01 μg/ml, median MIC 0.0001 μg/ml). An A-to-G mutation was not found at position 2047 in the 23S rRNA gene in 80 isolates that had a diameter of growth inhibition zone less than 42 mm. Conclusion. This study demonstrates no significant decrease in the susceptibility to erythromycin and azithromycin among B. pertussis strains isolated in Russia in 2014–2020. The studied B. pertussis strains exhibit a homozygous phenotype for macrolide resistance.

коклюшBordetella pertussisантибиотикочувствительностьэритромициназитромициндиско-диффузионный методградиентный методминимальная подавляющая концентрациягомозиготный фенотипwhooping coughBordetella pertussisantimicrobial susceptibilityerythromycinazithromycindisk diffusion methodgradient methodminimum inhibitory concentrationhomozygous phenotypeReferencesPechere J.C. Macrolide resistance mechanisms in Gram-positive cocci // International Journal of Antimicrobial Agents. 2001. Vol. 18. Suppl. 1. P. 25–28.Pechere JC. Macrolide resistance mechanisms in Gram-positive cocci. International Journal of Antimicrobial Agents. 2001;18(Suppl 1):25–8. doi: 10.1016/s0924-8579(01)00407-1.Bartkus J.M., Juni B.A., Ehresmann K., et al. Identification of a mutation associated with erythromycin resistance in Bordetella pertussis: implications for surveillance of antimicrobial resistance // Journal of Clinical Microbiology. 2003. Vol. 41, № 3. P. 1167–1172.Bartkus JM, Juni BA, Ehresmann K, et al. Identification of a mutation associated with erythromycin resistance in Bordetella pertussis: implications for surveillance of antimicrobial resistance. Journal of Clinical Microbiology. 2003;41(3):1167–72. doi: 10.1128/JCM.41.3.1167-1172.2003.Menninger J.R. Functional consequences of binding macrolides to ribosomes // The Journal of Antimicrobial Chemotherapy. 1985. Vol. 16. Suppl. A. P. 23–34.Menninger JR. Functional consequences of binding macrolides to ribosomes. The Journal of Antimicrobial Chemotherapy. 1985;16(Suppl A):23–34. doi: 10.1093/jac/16.suppl_a.23.Бакулина Н. А., Ефимова О. Г., Высотский В. В. и др. Ультраструктура свежевыделенных штаммов B. Pertussis. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 1984. Т. 61, № 11. С. 24–26.Bakulina NA, Efimova OG, Vyisotskiy VV, et al. Ultrastructure of clinical isolates of B. pertussis. Journal of Microbiology, Epidemiology and Immunobiology. 1984;61(11):24–6 (In Russ.).Wang Z., Han R., Liu Y., et al. Direct detection of erythromycin-resistant Bordetella pertussis in clinical specimens by PCR. Journal of Clinical Microbiology. 2015. Vol. 53, № 11. P. 3418–3422.Wang Z, Han R, Liu Y, et al. Direct Detection of erythromycin-resistant Bordetella pertussis in clinical specimens by PCR. Journal of Clinical Microbiology. 2015;53(11):3418–22. doi: 10.1128/JCM.01499-15.Waters V., Halperin S.A. Bordetella pertussis. In: Bennett J.E., Dolin R., Blaser M.J., editors. Mandell, Douglas, and Bennett’s principles and practice of infectious diseases. 8th edition. Philadelphia: Elsevier Science; 2014. P. 2619–2628.Waters V, Halperin SA. Bordetella pertussis. In: Bennett JE, Dolin R, Blaser MJ, editors. Mandell, Douglas, and Bennett’s principles and practice of infectious diseases. 8th edition. Philadelphia: Elsevier Science; 2014. P. 2619–28.Lewis K., Saubolle M.A., Tenover F.C., et al. Pertussis caused by an erythromycin-resistant strain of Bordetella pertussis. The Pediatric Infectious Disease Journal. 1995. Vol. 14, № 5. P. 388–391.Lewis K, Saubolle MA, Tenover FC, et al. Pertussis caused by an erythromycin-resistant strain of Bordetella pertussis. The Pediatric Infectious Disease Journal. 1995;14(5):388–91. doi: 10.1097/00006454-199505000-00010.Korgenski K., Daly J.A. Surveillance and detection of erythromycin resistance in Bordetella pertussis isolates recovered from a pediatric population in the Intermountain West Region of the United States. Journal of Clinical Microbiology. 1997. Vol. 35, № 11. P. 2989–2991.Korgenski K, Daly JA. Surveillance and detection of erythromycin resistance in Bordetella pertussis isolates recovered from a pediatric population in the Intermountain West Region of the United States. Journal of Clinical Microbiology. 1997;35(11):2989–91. doi: 10.1128/jcm.35.11.2989-2991.1997.Mirzaei B., Bameri Z., Babaei R., et al Isolation of high level macrolide resistant Bordetella pertussis without transition mutation at domain V in Iran. Jundishapur Journal of Microbiology. 2015. Vol. 8, № 7. P. e18190.Mirzaei B, Bameri Z, Babaei R, et al. Isolation of high level macrolide resistant Bordetella pertussis without transition mutation at domain V in Iran. Jundishapur Journal of Microbiology. 2015;8(7):e18190. doi: 10.5812/jjm.8(5)2015.18190.Guillot S., Descours G., Gillet Y., et al. Macrolide resistant Bordetella pertussis infection in newborn girl, France. Emerging Infectious Diseases. 2012. Vol. 18, № 6. P. 966–968.Guillot S, Descours G, Gillet Y, et al. Macrolide resistant Bordetella pertussis infection in newborn girl, France. Emerging Infectious Diseases. 2012;18(6):966–8. doi: 10.3201/eid1806.120091.Kamachi K., Duong H.T., Dang A.D., et al. Macrolide-resistant Bordetella pertussis, Vietnam, 2016–2017. Emerging Infectious Diseases. 2020. Vol. 26, № 10. P. 2511–2513.Kamachi K, Duong HT, Dang AD, et al. Macrolide-resistant Bordetella pertussis, Vietnam, 2016-2017. Emerging Infectious Diseases. 2020;26(10):2511–13. doi: 10.3201/eid2610.201035.Wilson K.E., Cassiday P.K., Popovic T., et al. Bordetella pertussis isolates with a heterogeneous phenotype for erythromycin resistance. Journal of Clinical Microbiology. 2002. Vol. 40, № 8. P. 2942–2944.Wilson KE, Cassiday PK, Popovic T, et al. Bordetella pertussis isolates with a heterogeneous phenotype for erythromycin resistance. Journal of Clinical Microbiology. 2002;40(8):2942–4. doi: 10.1128/JCM.40.8.2942-2944.2002.Xu Z., Wang Z., Luan Y., et al. Genomic epidemiology of erythromycin-resistant Bordetella pertussis in China. Emerging Microbes & Infections. 2019. Vol. 8, № 1. P. 461–470.Xu Z, Wang Z, Luan Y, et al. Genomic epidemiology of erythromycin-resistant Bordetella pertussis in China. Emerging Microbes & Infections. 2019;8(1):461–70. doi: 10.1080/22221751.2019.1587315.Li L., Deng J., Ma X., et al. High prevalence of macrolide-resistant Bordetella pertussis and ptxP1 genotype, mainland China, 2014–2016. Emerging Infectious Diseases. 2019. Vol. 25, № 12. P. 2205–2214.Li L, Deng J, Ma X, et al. High prevalence of macrolide-resistant Bordetella pertussis and ptxP1 genotype, mainland China, 2014-2016. Emerging Infectious Diseases. 2019;25(12):2205–14. doi: 10.3201/eid2512.181836.Wang Z., Cui Z., Li Y., et al. High prevalence of erythromycin-resistant Bordetella pertussis in Xi’an, China. Clinical Microbiology and Infection. 2014. Vol. 20, № 11. P. O825–O830.Wang Z, Cui Z, Li Y, et al. High prevalence of erythromycin-resistant Bordetella pertussis in Xi’an, China. Clinical Microbiology and Infection. 2014;20(11):O825–30. doi: 10.1111/1469-0691.12671.Yang Y., Yao K., Ma X., et al. Variation in Bordetella pertussis susceptibility to erythromycin and virulence-related genotype changes in China (1970–2014). PLoS One. 2015. Vol. 10, № 9. P. e0138941.Yang Y, Yao K, Ma X, et al. Variation in Bordetella pertussis susceptibility to erythromycin and virulence-related genotype changes in China (1970-2014). PLoS One. 2015;10(9):e0138941. doi: 10.1371/journal.pone.0138941.Feng Y., Chiu C.H., Heininger U., et al. Emerging macrolide resistance in Bordetella pertussis in mainland China: findings and warning from the global pertussis initiative. The Lancet regional health. Western Pacific. 2021. Vol. 8. P. 100098.Feng Y, Chiu CH, Heininger U, et al. Emerging macrolide resistance in Bordetella pertussis in mainland China: findings and warning from the global pertussis initiative. The Lancet regional health. Western Pacific. 2021;8:100098. doi: 10.1016/j.lanwpc.2021.100098.Dinu S., Guillot S., Dragomirescu C.C., et al. Whooping cough in South-East Romania: a 1-year study. Diagnostic Microbiology and Infectious Disease. 2014. Vol. 78, № 3. P. 302–306.Dinu S, Guillot S, Dragomirescu CC, et al. Whooping cough in South-East Romania: a 1-year study. Diagnostic Microbiology and Infectious Disease. 2014;78(3):302–6. doi: 10.1016/j.diagmicrobio.2013.09.017.Fry N.K., Duncan J., Vaghji L., et al. Antimicrobial susceptibility testing of historical and recent clinical isolates of Bordetella pertussis in the United Kingdom using the Etest method. European Journal of Clinical Microbiology & Infectious Diseases. 2010. Vol. 29, № 9. P. 1183–1185.Fry NK, Duncan J, Vaghji L, et al. Antimicrobial susceptibility testing of historical and recent clinical isolates of Bordetella pertussis in the United Kingdom using the Etest method. European Journal of Clinical Microbiology & Infectious Diseases. 2010;29(9):1183–5. doi: 10.1007/s10096-010-0976-1.Galanakis E., Englund J.A., Abe P., et al. Antimicrobial susceptibility of Bordetella pertussis isolates in the state of Washington. International Journal of Antimicrobial Agents. 2007. Vol. 29, № 5. P. 609–611.Galanakis E, Englund JA, Abe P, et al. Antimicrobial susceptibility of Bordetella pertussis isolates in the state of Washington. International Journal of Antimicrobial Agents. 2007;29(5):609–11. doi: 10.1016/j.ijantimicag.2006.11.024.Horiba K., Nishimura N., Gotoh K., et al. Clinical manifestations of children with microbiologically confirmed pertussis infection and antimicrobial susceptibility of isolated strains in a regional hospital in Japan, 2008–2012. Japanese Journal of Infectious Diseases. 2014. Vol. 67, № 5. P. 345–348.Horiba K, Nishimura N, Gotoh K, et al. Clinical manifestations of children with microbiologically confirmed pertussis infection and antimicrobial susceptibility of isolated strains in a regional hospital in Japan, 2008-2012. Japanese Journal of Infectious Diseases. 2014;67(5):345–8.Jakubu V., Zavadilova J., Fabianova K., et al. Trends in the minimum inhibitory concentrations of erythromycin, clarithromycin, azithromycin, ciprofloxacin, and trimethoprim / sulfamethoxazole for strains of Bordetella pertussis isolated in the Czech Republic in 1967–2015. Central European Journal of Public Health. 2017. Vol. 25, № 4. P. 282–286.Jakubu V, Zavadilova J, Fabianova K, et al. Trends in the minimum inhibitory concentrations of erythromycin, clarithromycin, azithromycin, ciprofloxacin, and trimethoprim / sulfamethoxazole for strains of Bordetella pertussis isolated in the Czech Republic in 1967-2015. Central European Journal of Public Health. 2017;25(4):282–6. doi: 10.21101/cejph.a4948.Marchand-Austin A., Memari N., Patel S.N., et al. Surveillance of antimicrobial resistance in contemporary clinical isolates of Bordetella pertussis in Ontario, Canada. International Journal of Antimicrobial Agents. 2014. Vol. 44, № 1. P. 82–84.Marchand-Austin A, Memari N, Patel SN, et al. Surveillance of antimicrobial resistance in contemporary clinical isolates of Bordetella pertussis in Ontario, Canada. International Journal of Antimicrobial Agents. 2014;44(1):82–4. doi: 10.1016/j.ijantimicag.2014.04.001.Sintchenko V., Brown M., Gilbert G.L. Is Bordetella pertussis susceptibility to erythromycin changing? MIC trends among Australian isolates 1971–2006. The Journal of Antimicrobial Chemotherapy. 2007. Vol. 60, № 5. P. 1178–1179.Sintchenko V, Brown M, Gilbert GL. Is Bordetella pertussis susceptibility to erythromycin changing? MIC trends among Australian isolates 1971-2006. The Journal of Antimicrobial Chemotherapy. 2007;60(5):1178–9. doi: 10.1093/jac/dkm343.Souder E., Vodzak J., Evangelista A.T., et al. Antimicrobial susceptibility and molecular detection of pertactin-producing and pertactin-deficient Bordetella pertussis. The Pediatric Infectious Disease Journal. 2017. Vol. 36, № 1. P. 119–121.Souder E, Vodzak J, Evangelista AT, et al. Antimicrobial susceptibility and molecular detection of pertactin-producing and pertactin-deficient Bordetella pertussis. The Pediatric Infectious Disease Journal. 2017;36(1):119–21. doi: 10.1097/INF.0000000000001366.Yao S.M., Liaw G.J., Chen Y.Y., et al. Antimicrobial susceptibility testing of Bordetella pertussis in Taiwan prompted by a case of pertussis in a paediatric patient. Journal of Medical Microbiology. 2008. Vol. 57. Pt. 12. P. 1577–1580.Yao SM, Liaw GJ, Chen YY, et al. Antimicrobial susceptibility testing of Bordetella pertussis in Taiwan prompted by a case of pertussis in a paediatric patient. Journal of Medical Microbiology. 2008;57(Pt 12):1577–80. doi: 10.1099/jmm.0.2008/002857-0.Clinical and Laboratory Standards Institute. Performance standards for antimicrobial susceptibility testing, 31st edition. USA: Clinical and Laboratory Standards Institute; 2021.Clinical and Laboratory Standards Institute. Performance standards for antimicrobial susceptibility testing, 31st edition. USA: Clinical and Laboratory Standards Institute; 2021.European Committee on Antimicrobial Susceptibility Testing. Routine and extended internal quality control for MIC determination and disk diffusion as recommended by EUCAST, Version 11.0. Basel: EUCAST; 2021.European Committee on Antimicrobial Susceptibility Testing. Routine and extended internal quality control for MIC determination and disk diffusion as recommended by EUCAST, Version 11.0. Basel: EUCAST; 2021.Hill B.C., Baker C.N., Tenover F.C. A simplified method for testing Bordetella pertussis for resistance to erythromycin and other antimicrobial agents. Journal of Clinical Microbiology. 2000. Vol. 38, № 3. P. 1151–1155.Hill BC, Baker CN, Tenover FC. A simplified method for testing Bordetella pertussis for resistance to erythromycin and other antimicrobial agents. Journal of Clinical Microbiology. 2000;38(3):1151–5. doi: 10.1128/JCM.38.3.1151-1155.2000.Gordon K.A., Fusco J., Biedenbach D.J., et al. Antimicrobial susceptibility testing of clinical isolates of Bordetella pertussis from northern California: report from the SENTRY Antimicrobial Surveillance Program. Antimicrobial Agents and Chemotherapy. 2001. Vol. 45, № 12. P. 3599–3600.Gordon KA, Fusco J, Biedenbach DJ, et al. Antimicrobial susceptibility testing of clinical isolates of Bordetella pertussis from northern California: report from the SENTRY Antimicrobial Surveillance Program. Antimicrobial Agents and Chemotherapy. 2001;45(12):3599–600. doi: 10.1128/AAC.45.12.3599-3600.2001.

The authors declare that there are no conflicts of interest present.