Лазиз Надирович Туйчиев – д. м. н., профессор, заведующий кафедрой инфекционных и детских инфекционных болезней; ведущий научный сотрудник
+998-71-214-83-11
Узбекистан
Laziz N. Tuychiev – Dr. Sci. (Med.), professor, Head of Infectious and Children’s Infectious Diseases Department; Leading Researcher
+998-71-214-83-11
Tashkent
Ботир Мирхашимович Таджиев – д. м. н., профессор, директор; заведующий кафедры инфекционных болезней, детских инфекционных болезней, фтизиатрии и пульмонологии
+998-90-036-14-56
Ташкент
Botir M. Tadjiev – Dr. Sci. (Med.), professor, director; Head of the Department of Infectious Diseases, Pediatric Infectious Diseases, Phthisiology, and Pulmonology
+998-90-036-14-56
Tashkent
Нигора Убайдуллаевна Таджиева – д. м. н., профессор, заместитель директора по научной работе; профессор кафедры инфекционных и детских инфекционных болезней
+998-71-243-3605 +998-90-355-5171
Ташкент
Nigora U. Tadjieva – Dr. Sci. (Med.), Professor, Deputy Director for Science; Professor of the Infectious and Children’s Infectious Diseases
+998-71-243-3605
+998-90-355-5171
Tashkent
Амир Мангу-Темирович Бектимиров – к. м. н., старший научный сотрудник, заведующий лабораторией
+998-90-933-34-59
Ташкент
Amir A-Т. Bektemirov – Cand. Sci. (Med.), Senior Researcher
+9-9890-933-34-59
Tashkent
Одилжон Шодиевич Касимов – д. м. н., ведущий научный сотрудник бактериологической лаборатории
+998-90-067-75-10
Ташкент
Odiljon Sh. Kasimov – Dr. Sci. (Med.), Leading Researcher of the Bacteriological Laboratory
+998-90-067-75-10
Tashkent
Нигора Набиевна Каримова – врач-лаборант клинико-диагностической лаборатории
Ташкент
Nigora N. Karimova – Laboratory Physician of the Clinical Diagnostic Laboratory
Tashkent
Жахонгир Абралович Анваров – PhD, доцент кафедры инфекционных и детских инфекционных болезней ; младший научный сотрудник
+998-94-626-90-63
Ташкент
Jakhongir A. Anvarov – PhD, Associated professor of the Infectious and Children’s Infectious Diseases; Junior Researcher
+998-94-626-90-6
Tashkent
Акмал Пулатович Юсупов – PhD, старший преподаватель кафедры медицины
+998-97-776-7168
Ташкент
Yusupov Akmаl Pulatovich – PhD, Senior Lecturer at the Department of Medicine, Alfraganus University
+998-97-776-7168
Tashkent
Распространенность брюшного тифа и паратифов во всех странах мира является важной проблемой в сфере здравоохранения (а паратиф В, в том числе – для ветеринарии). Использование агглютинирующих диагностических сывороток позволит проводить серологическую идентификацию бактерий рода Salmonella в реакции агглютинации. Цель. Получение гипериммунных агглютинирующих сывороток против сальмонелл с использованием различных схем иммунизации и исследование биохимических, а также иммунологических показателей этих сывороток. Материалы и методы. В качестве материала для иммунизации (при получении гипериммунной антисыворотки) использовались нижеследующие штаммы сальмонелл: S. Typhi 002140/4446; S. typhi 003788/18, S. typhi 003909/135, S. typhi 003901/418, S. typhimurium 004453/11, S. Enteritidis 000571/867, S. paratyphi B 001150/34, S. anatum 001022/885, S. paratyphi А, 000652/217, Для иммунизации использовались корпускулярные антигены инактивированных штаммов сальмонелл. Проводили исследование гипериммунной сыворотки. Использовались бактериологические, биохимические, серологические и статистические методы. Результаты. В результате экспериментальных исследований был создан банк из 72 образцов диагностических сывороток для индикации сальмонелл. При исследовании поливалентных диагностических сывороток наблюдалось повышение уровня общего белка, глобулина, IgA и IgG после 1-, 2- и 3-й иммунизации (на 7-й, 14-й и 21-й день). Заключение. Учитывая, что показатели общего белка, альбумина, глобулина и IgG у экспериментальных животных достигали максимума на 28-й день после иммунизации, таким образом спустя 4-й недели можно получить сыворотки с высокой специфической активностью против разных штаммов сальмонелл.
The spread of typhoid and paratyphoid fevers across all countries highlights their significance as a major public health concern (with Paratyphoid B also being relevant for veterinary medicine). The use of agglutinating diagnostic sera enables the serological identification of Salmonella bacteria through agglutination reactions. Purpose – to produce hyperimmune agglutinating sera against Salmonella using various immunization schemes and to study the biochemical and immunological parameters of the obtained serum samples. Materials and Methods. The following Salmonella strains were used for immunization (in the production of hyperimmune antisera): S. typhi 002140/4446, S. typhi 003788/18, S. typhi 003909/135, S. typhi 003901/418, S. typhimurium 004453/11, S. enteritidis 000571/867, S. paratyphi B 001150/34, S. anatum 001022/885, S. paratyphi A 000652/217. These strains were obtained from the National Collection of Pathogenic Microorganisms (Groups III-IV of human infections) at the Republican Specialized Scientific and Practical Medical Center of Epidemiology, Microbiology, Infectious and Parasitic Diseases (RSSPMCEIPD) of the Ministry of Health of the Republic of Uzbekistan. Corpuscular antigens of inactivated Salmonella strains were used for immunization. The hyperimmune sera were studied using bacteriological, biochemical, serological, and statistical methods. Results. Experimental research led to the creation of a bank of 72 diagnostic serum samples for Salmonella detection. The study of polyvalent diagnostic sera showed an increase in total protein, globulin, IgA, and IgG levels after the first, second, and third immunizations (on days 7, 14, and 21). Conclusion. Given that the levels of total protein, albumin, globulin, and IgG in the experimental animals peaked on day 28 of immunization, sera with high specific activity against various Salmonella strains can be obtained after four weeks.
The authors declare that there are no conflicts of interest present.