epidemiologyЭпидемиология и ВакцинопрофилактикаEpidemiology and Vaccinal Prevention2073-30462619-0494«Numicom» LLC10.31631/2073-3046-2025-24-6-11-18epidemiology-2335Research ArticleОРИГИНАЛЬНЫЕ СТАТЬИORIGINAL ARTICLESСеротиповой состав, клональность и распространенность генов вирулентности у изолятов Streptococcus agalactiae, выделенных в РФ в 2021–2024 гг.Serotypes, Clonality, and Virulence Gene Distribution in Streptococcus agalactiae Isolates recovered in Russian Federation in 2021–2024https://orcid.org/0000-0003-1096-4324ЕгороваЕ. А.EgorovaE. A.

Егорова Екатерина Александровна, к. б. н., ведущий научный сотрудник, исследовательский центр по изучению бактериальных инфекций

125212, Москва, ул. Адмирала Макарова, 10

+7 (495) 459-12-88

+7 (916) 594-69-31

Egorova Ekaterina A., Cand. Sci. (Biol.), Leading researcher, Center for research in bacterial infections

10, Admiral Makarov Street, Moscow, 125212

+7 (495) 459-12-88

+7 (916) 594-69-31

yegorovaea@gmail.comhttps://orcid.org/0000-0003-0189-3608УрбанЮ. Н.UrbanY. N.

Юлия Николаевна Урбан  – к. б. н., руководитель Геномного центра

125212, Москва, ул. Адмирала Макарова, 10

+7 (495) 459-12-88

+7 (926) 181-05-60

 

Yulia N. Urban  – Cand. Sci. (Biol.), Head of the Genomic center

10, Admiral Makarov Street, Moscow, 125212

+7 (495) 459-12-88

+7 (926) 181-05-60

urban@gabrich.ruhttps://orcid.org/0000-0001-9289-0765БайраковаА. Л.BayrakovaA. L.

Александра Львовна Байракова – к. б. н., ведущий научный сотрудник, Исследовательский центр по изучению бактериальных инфекций

125212, Москва, ул. Адмирала Макарова, 10

+7 (495) 459-12-88

+7 (926) 207-24-15

Alexandra L. Bairakova – Cand. Sci. (Biol.), Leading researcher, Center for research in bacterial infections

10, Admiral Makarov Street, Moscow, 125212

 +7 (495) 459-12-88

+7 (926) 207-24-15

bairakova@gabrich.ruhttps://orcid.org/0000-0002-0999-836XГречишниковаО. Г.GrechishnikovaO. G.

Ольга Геннадиевна Гречишникова – к. б. н., руководитель исследовательского центра по изучению бактериальных инфекций

125212, Москва, ул. Адмирала Макарова, 10

+7 (495) 459-12-88

+7 (965) 440-45-05

Olga G. Grechishnikova – Cand. Sci. (Biol.), Head of the Center for research in bacterial infections

10, Admiral Makarov Street, Moscow, 125212

+7 (495) 459-12-88

+7 (965) 440-45-05

grechishnikova@gabrich.ruhttps://orcid.org/0009-0002-7301-238XКузменюкВ. А.KuzmenokV. A.

Вячеслав Алексеевич Кузменюк – младший научный сотрудник, Центр мультиомиксных исследований микробиома человека

125212, Москва, ул. Адмирала Макарова, 10

+7 (999) 527-44-26

Vyacheslav А. Kuzmenok – junior research assistant, Center for multiomics research in human microbiome

10, Admiral Makarov Street, Moscow, 125212

+7 (999) 527-44-26

kuzmenok.vyacheslav@yandex.ruhttps://orcid.org/0000-0002-0463-0136ВоропаеваЕ. А.VoropaevaE. A.

Елена Александровна Воропаева  – д. б. н., заместитель директора по медицинской биотехнологии

125212, Москва, ул. Адмирала Макарова, 10

+7 (495) 452-18-16

+7 (916) 532-03-22

Elena A. Voropaeva – Dr. Sci. (Biol.), Vice Director for medical biotechnology

10, Admiral Makarov Street, Moscow, 125212

+7 (495) 452-18-16

+7 (916) 532-03-22

voropaeva@gabrich.ruРумянцеваЕ. В.RumiantsevaE V.

Елена Владимировна Румянцева – руководитель лаборатории микробиологии

191119, Санкт-Петербург, ул. Достоевского, д. 40-44, литр. А, часть пом. 9Н (пом. 17)

+7 (911) 907-21-62

Elena V. Rumiantseva – Head of microbiology laboratory

40-44, litr. A, chast pom. 9N (pom. 17), Dostoyevskogo str., Saint Petersburg, 191119

+7 (911) 907-21-62

erumyantseva@labstori.ruМитьковецП. В.MitkovetsP. V.

Полина Владимировна Митьковец  – врач-бактериолог

191119, Санкт-Петербург, ул. Достоевского, д. 40-44, литр. А, часть пом. 9Н (пом. 17)

+7 (911) 763-03-77

Polina V. Mitkovets – bacteriologist

40-44, litr. A, chast pom. 9N (pom. 17), Dostoyevskogo str., Saint Petersburg, 191119

+7 (911) 763-03-77

vaeltajapolina@yandex.ruФБУН «Московский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии им. Г. Н. Габричевского РоспотребнадзораРоссияG. N. Gabrichevsky Research Institute for Epidemiology and MicrobiologyRussian FederationМедицинский Центр ЛабсториРоссияG. N. Gabrichevsky Research Institute for Epidemiology and MicrobiologyRussian FederationМедицинский Центр ЛабсториРоссияLabstory Medical CenterRussian Federation2025020120262461118Copyright © Егорова Е.А., Урбан Ю.Н., Байракова А.Л., Гречишникова О.Г., Кузменюк В.А., Воропаева Е.А., Румянцева Е.В., Митьковец П.В., 20262026Егорова Е.А., Урбан Ю.Н., Байракова А.Л., Гречишникова О.Г., Кузменюк В.А., Воропаева Е.А., Румянцева Е.В., Митьковец П.В.Egorova E.A., Urban Y.N., Bayrakova A.L., Grechishnikova O.G., Kuzmenok V.A., Voropaeva E.A., Rumiantseva E.V., Mitkovets P.V.Данная работа распространяется под лицензией Creative Commons Attribution 4.0.This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 License.https://www.epidemvac.ru/jour/article/view/2335Актуальность

Актуальность. Streptococcus agalactiae (стрептококк группы В (СГВ)) является одним из ведущих возбудителей тяжелых перинатальных инфекций. В настоящее время основные характеристики популяции штаммов Streptococcus agalactiae в РФ остаются недостаточно изученными, что указывает на необходимость молекулярно-генетического мониторинга ее состава.

Цель

Цель. Провести комплексное исследование распространенности генетических детерминант вирулентности, а также серотипового и клонального составов изолятов S. agalactiae, выделенных в Российской Федерации в 2021–2024 гг.

Материалы и методы

Материалы и методы. Исследовано 72 неинвазивных изолята S. agalactiae, выделенных у 30 мужчин и 42 женщин в возрасте от 18 до 55 лет в Северо-Западном федеральном округе. Изоляты были выделены из различных видов биологического материала: вагинальных мазков, мазков из цервикального канала, уретры, секрета предстательной железы, мочи, спермы. Идентификация изолятов проводилась бактериологическими методами, а также с использованием латексагглютинации и ПЦР. Для определения серотипов, сиквенс-типов (ST), клональных комплексов (СС) и генов вирулентности применялось полногеномное секвенирование (WGS) с последующим биоинформатическим анализом.

Результаты и обсуждение

Результаты и обсуждение. Установлено, что преобладающими серотипами являются V (34,7 %), Ia (22,2%) и III (22,2 %), что в совокупности составляет 79,1 % изолятов. Выявлено 22 сиквенс-типа (ST), объединенных в 7 клональных комплексов (CC). Доминирующими являлись CC1 (29,2 %), CC23 (23,6 %), CC19 (19,4 %) и CC17 (12,5 %). Наиболее распространенным генотипом пилей был PI-1+PI-2A1 (36%). Гены поверхностного белка srr1 и альфа-подобных белков (Alph) выявлялись у 80,6% и 58% изолятов соответственно. Высоковирулентный комплекс CC17 характеризовался наличием генов hvgA, srr2 и rib.

Заключение

Заключение. Популяция S. agalactiae в РФ характеризуется значительным генетическим разнообразием при доминировании серотипов V, Ia, III и клональных комплексов CC1, CC23, CC19 и CC17. Выявление гипервирулентного клона CC17 (12,5 % изолятов) указывает на циркуляцию штаммов высокого риска, ассоциированных с неонатальными инвазивными инфекциями. Полученные результаты указывают на то, что шестивалентная конъюгированная вакцина потенциально может охватывать большую часть циркулирующих штаммов. Установленные профили генов вирулентности (пили, поверхностные белки) и их ассоциация с определенными клональными комплексами подтверждают их перспективность в качестве мишеней для разработки серотипнезависимых вакцин.

Background

Background. Streptococcus agalactiae (Group B Streptococcus, GBS) remains a leading cause of severe perinatal infections. The key features of S. agalactiae population in Russia remain underexplored, necessitating comprehensive molecular surveillance.

Aim

Aim. This study aimed to perform a comprehensive analysis of the serotype distribution, clonality, and prevalence of genetic virulence determinants in S. agalactiae isolates recovered in Russia in 2021–2024.

Materials and Methods

Materials and Methods. We analysed 72 non-invasive S. agalactiae isolates. The isolates were collected in Northwestern Federal District between 2021 and 2024 from patients (30 males and 42 females, aged 18–55 years). We recovered the isolates from vaginal, cervical, and urethral swabs, urine, prostate secretion, and semen. We performed initial species identification by standard bacteriological methods, latex agglutination and PCR. The isolates were whole-genome sequenced. We used bioinformatic analysis to derive serotypes, multi-locus sequence types (ST), clonal complexes (CC) and virulence genes from genome data.

Results and Discussion

Results and Discussion. Our data revealed that serotypes V (34.7 %), Ia (22.2%), and III (22.2 %) were predominant, collectively accounting for 79.1 % of the isolates. The isolates exhibited high genetic diversity, comprising 22 sequence types (STs) grouped into 7 clonal complexes (CCs). The dominant CCs were CC1 (29.2 %), CC23 (23.6 %), CC19 (19.4 %), and CC17 (12.5 %). The most prevalent pilus genotype was PI-1+PI-2a1 (36%). The genes encoding surface protein Srr1 and Alp-like proteins were detected in 80.6% and 58% of isolates, respectively. The isolated of hypervirulent CC17 complex carried hvgA, srr2, and rib genes.

Conclusion

Conclusion. We found that the S. agalactiae isolates exhibited high genetic diversity, with predominant serotypes V, Ia, and III and clonal complexes CC1, CC23, CC19, and CC17. Our analysis revealed a prevalence (12.5%) of the hypervirulent CC17 clone, confirming the circulation of high-risk strains associated with neonatal invasive disease. Our results indicate that a hexavalent conjugate vaccine would likely cover a majority of the circulating strains. We identified specific virulence gene profiles and their association with certain clonal complexes. Our results suggest that the revealed virulence factors are promising targets for serotype-independent vaccine development.

Streptococcus agalactiaeполногеномное секвенирование (WGS)серотипыклональные комплексыповехностные белкивакциныStreptococcus agalactiaewhole-genome sequencing (WGS)serotypesclonal complexes virulence genesvaccinesReferencesCoggins SA, Puopolo KM. Neonatal Group B Streptococcus Disease Pediatrics in Review. 2024. Vol. 45, N2. P. 63–73.Coggins SA, Puopolo KM. Neonatal Group B Streptococcus Disease. Pediatr Rev. 2024;45(2):63–73. doi:10.1542/pir.2023-006154Gonçalves BP, Procter SR, Paul P, et al. Group B streptococcus infection during pregnancy and infancy: estimates of regional and global burden The Lancet Global Health. 2022. Vol. 10, N6. P. e807–e819.Gonçalves BP, Procter SR, Paul P, et al. Group B streptococcus infection during pregnancy and infancy: estimates of regional and global burden. Lancet Glob Health. 2022;10(6):e807–e819. doi:10.1016/S2214-109X(22)00093-6Stephens K, Charnock-Jones DS, Smith GCS. Group B Streptococcus and the risk of perinatal morbidity and mortality following term labor American Journal of Obstetrics and Gynecology. 2023. Vol. 228, N5. P. S1305–S1312.Stephens K, Charnock-Jones DS, Smith GCS. Group B Streptococcus and the risk of perinatal morbidity and mortality following term labor. Am J Obstet Gynecol. 2023;228(5S):S1305–S1312. doi:10.1016/j.ajog.2022.07.051Paul P, Gonçalves BP, Le Doare K, Lawn JE. 20 million pregnant women with group B streptococcus carriage: consequences, challenges, and opportunities for prevention Current Opinion in Pediatrics. 2023. Vol. 35, N2. P. 223–230.Paul P, Gonçalves BP, Le Doare K, Lawn JE. 20 million pregnant women with group B streptococcus carriage: consequences, challenges, and opportunities for prevention. Curr Opin Pediatr. 2023;35(2):223–230. doi:10.1097/MOP.0000000000001223Russell NJ, Seale AC, O’Driscoll M, et al. Maternal Colonization With Group B Streptococcus and Serotype Distribution Worldwide: Systematic Review and Meta-analyses Clinical Infectious Diseases. 2017. Vol. 65, Suppl. 2. P. S100–S111.Russell NJ, Seale AC, O’Driscoll M, et al. Maternal Colonization With Group B Streptococcus and Serotype Distribution Worldwide: Systematic Review and Meta-analyses. Clin Infect Dis. 2017;65(suppl_2):S100–S111. doi:10.1093/cid/cix658Садова Н. В., Заплатников А. Л., Шипулина О. Ю. и др. Частота носительства Streptococcus agalactiae среди женщин детородного возраста и его роль в развитии врожденных инфекций: предварительные результаты пилотного исследования Медицинский совет. 2016. №16. С. 164–166.Sadova NV, Zaplatnikov AL, Shipulina ОY, Shargorodskaya AV, Podkopaev VN, Skachkova ТS, Smirnova VS. Streptococcus agalactiae carriage rate among women of childbearing age and its role in the development of congenital infections: preliminary results of a pilot study. Meditsinskiy sovet = Medical Council. 2016;(16):164–166. (In Russ.) https: doi.org/10.21518/2079-701X-2016-16-164-166Васильева В. А., Шипицына Е. В., Шалепо К. В, и др. Молекулярная эпидемиология инфекций, вызываемых стрептококками группы В у беременных и новорожденных, и разработка профилактических вакцин Журнал акушерства и женских болезней. 2018. Т. 67, №5. С. 62–73.Vasilyeva VA, Shipitsyna EV, Shalepo KV, Savicheva AM. Molecular epidemiology of infections caused by group B Streptococcus in pregnant women and newborns, and development of preventive vaccines. Journal of Obstetrics and Women’s Diseases. 2018;67(5):62–73. (In Russ.) doi: 10.17816/JOWD67562-73Чучукина О. А., Славнов Н. Н., Шураева С. А., Бочков И. А. Распространение стрептококков серогруппы В среди амбулаторных пациентов в Москве Эпидемиология и инфекционные болезни. Актуальные вопросы. 2016. №4. С. 23–26.Chuchukina OA, Slavnov NN, Shuraeva SA, Bochkov IA. Rasprostranenie streptokokkov serogruppy V sredi ambulatornykh patsientov v Moskve. Epidemiologiya i infektsionnye bolezni. aktual’nye voprosy. 2016;(4):23–26. (In Russ).Замарина Т. В., Алексеева В. В., Меркулова С. В. и др. Оценка спектра чувствительности к антибактериальным препаратам изолятов Streptococcus agalactiae, выделенных у женщин репродуктивного возраста на территории Волгоградской области Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия. 2024. Т. 26, № S1. С. 28–29. EDN XXNKCT.Zamarina TV, Alekseeva VV, Merkulova SV, et al. Otsenka spektra chuvstvitel’nosti k antibakterial’nym preparatam izolyatov Streptococcus agalactiae, vydelennykh u zhenshchin reproduktivnogo vozrasta na territorii Volgogradskoi oblasti. Klinicheskaya Mikrobiologiya i Antimikrobnaya Khimioterapiya. 2024;26(Suppl 1):28–29. (In Russ). EDN: XXNKCT.Pena JMS, Lannes-Costa PS, Nagao PE. Vaccines for Streptococcus agalactiae: current status and future perspectives Frontiers in Immunology. 2024. Vol. 15. P. 1430901.Pena JMS, Lannes-Costa PS, Nagao PE. Vaccines for Streptococcus agalactiae: current status and future perspectives. Front Immunol. 2024;15:1430. doi:10.3389/fimmu.2024.1430901Absalon J, Segall N, Block SL, et al. Safety and immunogenicity of a novel hexavalent group B streptococcus conjugate vaccine in healthy, non-pregnant adults: a phase 1/2, randomised, placebo-controlled, observer-blinded, dose-escalation trial The Lancet Infectious Diseases. 2021. Vol. 21, N2. P. 263–274.Absalon J, Segall N, Block SL, et al. Safety and immunogenicity of a novel hexavalent group B streptococcus conjugate vaccine in healthy, non-pregnant adults: a phase 1/2, randomised, placebo-controlled, observer-blinded, dose-escalation trial. Lancet Infect Dis. 2021;21(2):263–274. doi:10.1016/S1473-3099(20)30478-3Shipitsyna E, Shalepo K, Zatsiorskaya S, et al. Significant shifts in the distribution of vaccine capsular polysaccharide types and rates of antimicrobial resistance of perinatal group B streptococci within the last decade in St. Petersburg, Russia European Journal of Clinical Microbiology and Infectious Diseases. 2020. Vol. 39, N8. P. 1487–1493.Shipitsyna E, Shalepo K, Zatsiorskaya S, et al. Significant shifts in the distribution of vaccine capsular polysaccharide types and rates of antimicrobial resistance of perinatal group B streptococci within the last decade in St. Petersburg, Russia. Eur J Clin Microbiol Infect Dis. 2020;39(8):1487–1493. doi:10.1007/s10096-020-03864-1Колоусова К. А., Шипицына Е. В., Шалепо К. В., Савичева А. М. Virulence and pathogenicity factors of S. agalactiae strains isolated from pregnant women and newborns Журнал акушерства и женских болезней. 2021. Т. 70, №5. С. 15–22.Ksenia A. Kolousova, Elena V. Shipitsyna, Kira V. Shalepo, Alevtina M. Savicheva. Virulence and pathogenicity factors of S. agalactiae strains isolated from pregnant women and newborns. Journal of obstetrics and women’s diseases, 2021, 70(5): 15–22 DOI:10.17816/JOWD75671Шалепо К. С., Хуснутдинова Т. А., Будиловская О. В. и др. Молекулярно-генетические детерминанты вирулентности Streptococcus agalactiae, выделенных у беременных и новорожденных Санкт-Петербурга и Ленинградской области в 2010–2023 годах Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2024. Т. 101, №2. С. 217–226.Shalepo KS, Khusnutdinova TA, Budilovskaya OV, Krysanova AA, Sapozhnikov KV, Savicheva AM, Kogan IY. Molecular genetic determinants of virulence of Streptococcus agalactiae isolated from pregnant women and newborns in St. Petersburg and the Leningrad region in 2010–2023. Journal of microbiology, epidemiology and immunobiology. 2024;101(2):217–226. doi: 10.36233/0372-9311-501McGee L, Chochua S, Li Z, et al. Multistate, population-based distributions of candidate vaccine targets, clonal complexes, and resistance features of invasive Group B Streptococci within the US: 2015–2017 Clinical Infectious Diseases. 2021. Vol. 72, N6. P. 1004–1013.McGee L, Chochua S, Li Z, et al. Multistate, Population-Based Distributions of Candidate Vaccine Targets, Clonal Complexes, and Resistance Features of Invasive Group B Streptococci Within the United States, 2015-2017. Clin Infect Dis. 2021;72(6):1004–1013. doi:10.1093/cid/ciaa151Khan UB, Jauneikaite E, Andrews R, Chalker VJ, Spiller OB. Identifying large-scale recombination and capsular switching events in Streptococcus agalactiae strains causing disease in adults in the UK between 2014 and 2015 Microb Genom. 2022. Vol. 8, N3. P. 000783.Khan UB, Jauneikaite E, Andrews R, Chalker VJ, Spiller OB. Identifying large-scale recombination and capsular switching events in Streptococcus agalactiae strains causing disease in adults in the UK between 2014 and 2015. Microb Genom. 2022;8(3):000783. doi:10.1099/mgen.0.000783Кулешевич Е. В., Ильясов Ю. Я., Линник Д. С. и др. Распространенность островов патогенности PAI-A и PAI-A1 среди российских штаммов стрептококков группы В Журнал акушерства и женских болезней. 2021. Т. 70, №4. С. 65–72.Kuleshevich EV, Ilyasov YY, Linnik DS, Malchenkova AA, Arzhanova ON, Briko NI, Glushkova EV, Priputnevich TV, Suvorov AN. Russian strains of group B streptococci are different in the content and organization of the PAI-A and PAI-A1 pathogenicity islands. Journal of obstetrics and women’s diseases. 2021;70(4):65–72. doi: 10.17816/JOWD61875Lin SM, Jang AY, Zhi Y, et al. Vaccination With a Latch Peptide Provides Serotype-Independent Protection Against Group B Streptococcus Infection in Mice The Journal of Infectious Diseases. 2018. Vol. 217, N1. P. 93–102.Lin SM, Jang AY, Zhi Y, et al. Vaccination With a Latch Peptide Provides Serotype-Independent Protection Against Group B Streptococcus Infection in Mice. J Infect Dis. 2017;217(1):93–102. doi:10.1093/infdis/jix565Santillan DA, Rai KK, Santillan MK, Krishnamachari Y, Salem AK, Hunter SK. Efficacy of polymeric encapsulated C5a peptidase–based group B streptococcus vaccines in a murine model American Journal of Obstetrics and Gynecology. 2011. Vol. 205, N3. P. 249.e1–249.e8.Santillan DA, Rai KK, Santillan MK, Krishnamachari Y, Salem AK, Hunter SK. Efficacy of polymeric encapsulated C5a peptidase-based group B streptococcus vaccines in a murine model. Am J Obstet Gynecol. 2011;205(3):249.e1–249.e2498. doi:10.1016/j.ajog.2011.06.024De Zoysa A, Edwards K, Gharbia S, Underwood A, Charlett A, Efstratiou A. Non-culture detection of Streptococcus agalactiae (Lancefield group B Streptococcus) in clinical samples by real-time PCR Journal of Medical Microbiology. 2012. Vol. 61, Pt 8. P. 1086–1090.de Zoysa A, Edwards K, Gharbia S, Underwood A, Charlett A, Efstratiou A. Non-culture detection of Streptococcus agalactiae (Lancefield group B Streptococcus) in clinical samples by real-time PCR. J Med Microbiol. 2012;61(Pt 8):1086–1090. doi:10.1099/jmm.0.042879-0Prjibelski A, Antipov D, Meleshko D, Lapidus A, Korobeynikov A. Using SPAdes De Novo Assembler Current Protocols in Bioinformatics. 2020. Vol. 70, N1. P. e102.Prjibelski A, Antipov D, Meleshko D, Lapidus A, Korobeynikov A. Using SPAdes De Novo Assembler. Curr Protoc Bioinformatics. 2020;70(1):e102. doi:10.1002/cpbi.102Gurevich A, Saveliev V, Vyahhi N, Tesler G. QUAST: quality assessment tool for genome assemblies Bioinformatics. 2013. Vol. 29, N8. P. 1072–1075.Gurevich A, Saveliev V, Vyahhi N, Tesler G. QUAST: quality assessment tool for genome assemblies. Bioinformatics. 2013;29(8):1072–1075. doi:10.1093/bioinformatics/btt086Dyster V, Hung H. GBS-Typer-sanger-nf [Internet]. Доступно по: https: github.com/sanger-bentley-group/GBS-Typer-sanger-nf. Ссылка активна на 8 сентября 2025.Dyster V, Hung H. GBS-Typer-sanger-nf [Internet]. Available at: https: github.com/sanger-bentley-group/GBS-Typer-sanger-nf. Accessed: 8 September 2025.Jolley KA, Bray JE, Maiden MCJ. Open-access bacterial population genomics: BIGSdb software, the PubMLST.org website and their applications Wellcome Open Research. 2018. Vol. 3. P. 124.Jolley KA, Bray JE, Maiden MCJ. Open-access bacterial population genomics: BIGSdb software, the PubMLST.org website and their applications. Wellcome Open Res. 2018;3:124. doi:10.12688/wellcomeopenres.14826.1Mangiola S, Papenfuss A. tidyHeatmap: an R package for modular heatmap production based on tidy principles Journal of Open Source Software. 2020. Vol. 5, N52. P. 2472.Mangiola S, Papenfuss A. tidyHeatmap: an R package for modular heatmap production based on tidy principles. J Open Source Softw. 2020;5(52):2472. https: doi.org/10.21105/joss.02472Shabayek S, Vogel V, Jamrozy D, Bentley SD, Spellerberg B. Molecular Epidemiology of Group B Streptococcus Colonization in Egyptian Women Microorganisms. 2022. Vol. 11, N1. P. 38.Shabayek S, Vogel V, Jamrozy D, Bentley SD, Spellerberg B. Molecular Epidemiology of Group B Streptococcus Colonization in Egyptian Women. Microorganisms. 2022;11(1):38. doi:10.3390/microorganisms11010038Campisi E, Rinaudo CD, Donati C, et al. Serotype IV Streptococcus agalactiae ST-452 has arisen from large genomic recombination events between CC23 and the hypervirulent CC17 lineages Scientific Reports. 2016. Vol. 6. P. 29799.Campisi E, Rinaudo CD, Donati C, et al. Serotype IV Streptococcus agalactiae ST-452 has arisen from large genomic recombination events between CC23 and the hypervirulent CC17 lineages. Sci Rep. 2016;6:29799. doi:10.1038/srep29799Tavares T, Pinho L, Bonifácio Andrade E. Group B Streptococcal Neonatal Meningitis Clin Microbiol Rev. 2022. Vol. 35, N2. P. e0007921.Tavares T, Pinho L, Bonifácio Andrade E. Group B Streptococcal Neonatal Meningitis. Clin Microbiol Rev. 2022;35(2):e0007921. doi:10.1128/cmr.00079-21Choi JH, Kim TH, Kim ET, Kim YR, Lee H. Molecular epidemiology and virulence factors of group B Streptococcus in South Korea according to the invasiveness BMC Infectious Diseases. 2024. Vol. 24, N1. P. 740.Choi JH, Kim TH, Kim ET, Kim YR, Lee H. Molecular epidemiology and virulence factors of group B Streptococcus in South Korea according to the invasiveness. BMC Infect Dis. 2024;24(1):740. doi:10.1186/s12879-024-09625-1Pinto TCA, Oliveira LMA, da Costa NS, et al. Group B Streptococcus awareness month: vaccine and challenges underway International Journal of Infectious Diseases. 2021. Vol. 110. P. 279–280.Pinto TCA, Oliveira LMA, da Costa NS, et al. Group B Streptococcus awareness month: vaccine and challenges underway. Int J Infect Dis. 2021;110:279–280. doi:10.1016/j.ijid.2021.07.056Inventprise Inc. Phase I/II Study to a Assess the GBS-06 Vaccine Manufactured by Inventprise, Inc., in Healthy, Non-Pregnant, Adult Women of Childbearing Age. [Internet]. National Library of Medicine; 2025. Доступно по: https: clinicaltrials.gov/study/NCT06611371. Ссылка активна на 8 сентября 2025.Inventprise Inc. Phase I/II Study to a Assess the GBS-06 Vaccine Manufactured by Inventprise, Inc., in Healthy, Non-Pregnant, Adult Women of Childbearing Age. [Internet]. National Library of Medicine; 2025. Available at: https: clinicaltrials.gov/study/NCT06611371. Accessed: 8 September 2025.Gori A, Harrison OB, Mlia E, et al. Pan-GWAS of Streptococcus agalactiae Highlights Lineage-Specific Genes Associated with Virulence and Niche Adaptation mBio. 2020. Vol. 11, N3. P. e00728–20.Gori A, Harrison OB, Mlia E, et al. Pan-GWAS of Streptococcus agalactiae Highlights Lineage-Specific Genes Associated with Virulence and Niche Adaptation. mBio. 2020;11(3):e00728–20. doi:10.1128/mBio.00728-20Maeda T, Takayama Y, Fujita T, et al. Comparison between Invasive and Non-Invasive Streptococcus agalactiae Isolates from Human Adults, Based on Virulence Gene Profiles, Capsular Genotypes, Sequence Types, and Antimicrobial Resistance Patterns Japanese Journal of Infectious Diseases. 2021. Vol. 74, N4. P. 316–324.Maeda T, Takayama Y, Fujita T, et al. Comparison between Invasive and Non-Invasive Streptococcus agalactiae Isolates from Human Adults, Based on Virulence Gene Profiles, Capsular Genotypes, Sequence Types, and Antimicrobial Resistance Patterns. Jpn J Infect Dis. 2021;74(4):316–324. doi:10.7883/yoken.JJID.2020.761

The authors declare that there are no conflicts of interest present.