Изменение активности кислой и щелочной фосфатаз в иммунокомпетентных органах - критерий оценки эффективности иммунобиологических препаратов

Изучена динамика активности кислой фосфатазы и щелочной фосфатазы в тимусе и селезенке лабораторных мышей, иммунизированных препаратами клеточных стенок Francisella tularensis разных подвидов. Препараты клеточных стенок подвидов F. tularensis subsp. mediaasiatica А-61(385) и F. tularensis subsp. novicida В-399 A-Cole (386) стимулировали повышение активности кислой и щелочной фосфатазы в более ранние сроки (на 7 сутки) после иммунизации, чем остальные. Эти препараты также показали высокую протективную активность. На основании проведенного исследования можно заключить, что изучение динамики активности кислой и щелочной фосфатаз в иммунокомпетентных органах может служить одним из критериев оценки эффективности иммунобиологических препаратов.

туляремия, клеточная стенка, фосфатаза, тимус, селезенка, Francisella tularensis, cell wall, phosphatase, thymus, spleen

1. Основы клинической иммунологии. Чепель Э. Перевод с англ. 5-е издание. Москва: «ГЭОТАР-Медиа»; 2008.

2. Ковальчук Л.В., Ганковская Л.В., Мешкова Р.Я. Клиническая иммунология и аллергология с основами общей иммунологии. Москва: «ГЭОТАР-Медиа»; 2011.

3. Новикова И.А., Ходулеева С.А. Клиническая и лабораторная гематология. Минск: «Высшая школа»; 2013.

4. Федотова Г.Г., Киселева Р.Е. Изменение активности щелочной и кислой фосфатазы лейкоцитов в развитии неспецифического воспаления в легких. Успехи современного естествознания. 2007; 8: 123 - 124.

5. Лабораторные методы исследования в клинике. Меньшиков В.В. , ред. Москва. Медицина; 1987.

6. Шубич Ф.Г., Нагоев Б.С. Щелочная фосфатаза лейкоцитов в норме и патологии. Москва. Медицина; 1980.

7. Шестопалов А.В., Овсянников В.Г., Алексеева Н.С. Структурно-Цитохимические критерии активации нейтрофилов в ответ на острую висцеральную боль. Кубанский научный медицинский вестник. 2009; 5 (110): 148 - 152.

8. Bodansky A. Determination of serum phosphatase. Factors influencing the accuracy of determination. J. biol. Chem. 1933; 101: 93 - 104.

9. Корнева А.В., Николаев В.Б., Ястремская К.Ю., Марков Е.Ю., Войткова В.В., Соловьев С.Ю. и др. Результаты изучения иммуногенной активности клеточных оболочек Francisella. tularensis разных подвидов. Бюллетень ВСНЦ СО РАМН. 2015; 1: 63 - 67.

10. Фомина А.А., Малинин М.Л., Коннова С.А., Тихомирова Е.И. Влияние липополисахарида Azospirillum lipoferum sp59b на активность ключевых ферментов метаболизма мышей. Электронный научный журнал Современные проблемы науки и образования. 2015: 5.

11. Puga I., Cols M., Barra C., He B., Cassis L., Gentile M., Comerma L. B cell-helper neutrophils stimulate the diversification and production of immunoglobulin in the marginal zone of the spleen. Nature Immunol. 2012; 13: 170 - 180.

12. Обернихин С.С., Яглова Н.В. Структурно-функциональные изменения органов иммунной системы при развитии системного воспалительного ответа у потомства самок мышей, перенесших стимулирующее воздействие на иммунную систему в ранние сроки беременности. Иммунология. 2014; 1: 8 - 24.

13. Bowen I.D., Lewis G.H. Acid phosphatase activity and cell death in mouse thymus. Histochemistry. 1980; 65 (2): 173 - 179.

14. Bai M., Doukas M., Papoudou-Bai A. et al. Immunohistological analysis of cell cycle and apoptosis regulators in thymus. Ann. Anat. - Anatomischer Anzeiger. 2013; 195: 159 - 165.

15. Григорян Н.А. Морфофункциональная характеристика лимфоидной ткани при антигенной стимуляции и аутосенсибилизации: автореферат дис.. канд. мед. наук. Ереван; 1995.

16. Pearse G. Normal structure, function and histology of the thymus. Toxicol. Pathol. 2006; 34: 504 - 514.