Антибактериальная активность бензидамина гидрохлорида против клинических изолятов бактерий, выделенных от людей в России и Испании

Цель.  Изучить  антибактериальную  активность  бензидамина  гидрохлорида   против  клинических  изолятов  бактерий,  выделенных в лечебных учреждениях России, и сравнить полученные данные с данными аналогичного исследования на клинических изолятах бактерий, выделенных в Испании. Материалы и методы. В исследовании использовали клинические изоляты бактерий, относящихся к типичным возбудителям  инфекций в отоларингологии и гинекологии: Enterococcus spp., Escherichia coli, Klebsiella pneumoniae, Staphylococcus spp. и Streptococcus spp., выделенные от пациентов лечебных учреждений России; референс-штаммы Escherichia coli, Staphylococcus aureus и Streptococcus agalactiae, полученные из коллекции  ATCC; а также штамм Lactobacillus acidophilus, выделенный из пробиотического препарата «Лактобактерин». Антибактериальную активность препарата бензидамина гидрохлорида  определяли методом серийных разведений в агаре. Полученные результаты сравнивали с данными испанского исследования по изучению активности бензидамина против клинических изолятов и референс-штаммов,  проведенного на базе микробиологического подразделения госпиталя Сан-Пау в Барселоне в 2001 г. Результаты. Показано, что значения минимальной подавляющей концентрации (МПК) бензидамина  гидрохлорида   для  клинических  изолятов  грамотрицательных  и грамположительных бактерий,  выделенных от пациентов  в российских и испанских клиниках,  находятся приблизительно на одинаковом  уровне: для  E. coli они составили 640–1280  мг/л,  для  K. pneumoniae  – 512–1280  мг/л,  для  S. aureus – 256–1280  мг/л,  для  S. agalactiae  – 320–1280  мг/л, для S. pyogenes – 256–640  мг/л, для E. faecalis – 512 мг/л, для E. faecium – 256 мг/л, для S. mitis   640 мг/л, для S. Epidermidis 320–1280 мг/л, для S. pneumoniae – 40 мг/л, для S. viridans – 40 мг/л. Аналогичные данные получены при оценке чувствительности к бензидамину гидрохлориду  референс-штаммов  из коллекции  ATCC: для E. coli МПК составили 512–640 мг/л, для S. aureus – 512–640 мг/л, для S. agalactiae – 320 мг/л, для S. pneumoniae  – 640 мг/л. Пробиотический штамм L. acidophilus был устойчив к действию бензидамину гидрохлориду с МПК = 20000 мг/л. Заключение. Показано антимикробное действие бензидамина гидрохлорида против клинических штаммов, выделенных от пациентов лечебных учреждений в России и Испании. При этом отмечена устойчивость к данному препарату пробиотического штамма лактобактерий,  что указывает на возможность  применения бензидамина гидрохлорида в клинической практике в гинекологии и отоларингологии без риска подавления лактобактериальной нормофлоры человека. 

1. Дунаевский А.М., Кириченко И.М. Клиническое обоснование использования препарата мирамистин в терапии инфекционно-воспалительных заболеваний респираторной системы. Обзор литературы. // Поликлиника. 2013. Т. 5, № 3. С. 6–12.

2. Юркин С.А., Михирева М.М. Совершенствование местного медикаментозного лечения острых синуситов. // Российская ринология. 2009. Т. 17, № 2. С. 32.

3. Аполихина И.А., Муслимова С.З. Бактериальный вагиноз: что нового? // Гинекология. 2008. Т. 10, № 6. С. 36–37.

4. Славский А.Н., Мейтель И.Ю. Боль в горле: обоснование оптимального выбора препарата. // Медицинский совет. 2016. № 18. С. 128–132.

5. Свистушкин В.М., Никифорова Г.Н., Петрова Е.И. Бактериальные инфекции лор-органов: деликатная терапия. // Медицинский совет. 2017. № 8. С. 58–63.

6. Kuchar E., Miśkiewicz K., Szenborn L., Kurpas D. Respiratory tract infections in children in primary healthcare in Poland. // Adv Exp Med Biol. 2015. N 835. P. 53–9.

7. Краснова Н.А., Миронова Н.Г. Бактериальный вагиноз. Новый метод восстановления биотопа влагалища. // Вестник Самарского университета. Естественнонаучная серия. 2006. Т. 6–2, № 46. С. 95–99.

8. Серова О.Ф., Зароченцева Н.В., Меньшикова Н.С. Бактериальный вагиноз: лечение и профилактика. // Вопросы гинекологии, акушерства и перинатологии. 2009. Т. 8, № 1. С. 84–-86.

9. Кузнецова И.В. Вопросы диагностики и лечения инфекционных заболеваний влагалища. // Эффективная фармакотерапия. 2016. № 14. С. 12–21.

10. Ballesteros S., Ramón M.F., Martínez-Arrieta R. Ingestions of benzydamine-containing vaginal preparations. // Clin Toxicol (Phila). 2009. Vol. 47, N 2. P. 145–149.

11. Fanaki N.H., el-Nakeeb M.A. Antimicrobial activity of benzydamine, a non-steroid anti-inflammatory agent. // J Chemother. 1992. Vol. 4, N 6. P. 347–352.

12. Prats G. Determination of Benzydamine antibacterial activity against clinical strains: an in vitro study. Servicio de Microbiologia, Hospital de Sant Pau, Barcelona, Spain.2001, study of Angelini ACRAF S.p.A. #8655U01.

13. Определение чувствительности микроорганизмов к антибактериальным препаратам, методические указания МУК 4.2.1890-04. // Клин Микробиол Антимикроб Химиотер. 2004. Т .6, № 4. С. 306–359.

14. CLSI. Performance Standards for Antimicrobial Susceptibility Testing. 13th Edition. CLSI supplement M2-A8. Wayne, PA. Clinical and Laboratory Standards Institute, 2004.

15. Светоч Э.А., Теймуразов М.Г., Абаимова А.А., Фурсова Н.К. Антибиотикорезистентность и детекция генов устойчивости к ванкомицину у культур Enterococcus spp., выделенных от людей и промышленной птицы в Российской Федерации. // Материалы XI съезда Всероссийского научно-практического общества эпидемиологов, микробиологов и паразитологов «Обеспечение эпидемиологического благополучия: вызовы и решения». М. 16–17 ноября 2017 г. С. 380.

16. Прямчук С. Д., Фурсова Н. К., Абаев И. В. и др. Генетические детерминанты устойчивости к антибактериальным средствам в нозокомиальных штаммах Escherichia coli, Klebsiella spp. и Enterobacter spp., выделенных в России в 2003-2007 гг. // Антибиотики и химиотерапия. 2010. Т. 55, № 9–10. С. 3–10.

17. Слукин П. В., Асташкин Е. И., Ермоленко З. М., Фурсова Н. К., Ершова М. Г. Генетические детерминанты антибиотикорезистнтности и вирулентности уропатогенных Escherichia coli, выделенных в г. Ярославле в 2016–2017 гг. // Материалы 1-го Российского микробиологического конгресса, 17–18 октября 2017 г., Пущино-на-Оке. С. 124–125.

18. Volozhantsev N.V., Kislichkina A.A., Lev A.I., et al. Genome Sequences of Two NDM-1 Metallo-β-Lactamase-Producing Multidrug-Resistant Strains of Klebsiella pneumoniae with a High Degree of Similarity, One of Which Contains Prophage. // Genome Announc. 2017. Vol. 5, N 42. pii: e01173-17.

19. Скрябин Ю. П., Печерских Э. И., Коробова О. В., Шишкова Н. А., Абаев И. В. Идентификация эпидемических линий метициллин-резистентных Staphylococcus aureus, впервые выявленных в центральной России. Тезисы XIV Международного конгресса МАКМАХ по антимикробной химиотерапии. // Клиническая микробиология и антимикробная терапия. 2012. Т.14, № 2–S1. С. 20.