Preview

Эпидемиология и Вакцинопрофилактика

Расширенный поиск

Экспериментальные живые аттенуированные вакцины против жёлтой лихорадки на основе инфекционных ДНК

https://doi.org/10.31631/2073-3046-2019-18-1-18-25

Полный текст:

Аннотация

Актуальность. Живые аттенуированные вакцины широко применяются в практике здравоохранения, благодаря приемлемому соотношению пользы и риска, а также высокой рентабельности. Однократная иммунизация в детском возрасте вакциной 17D против желтой лихорадки (ЖЛ) в эндемичном районе обеспечивает защиту от различных генотипов возбудителя данного заболевания на пятьдесят лет. Основным недостатком живых аттенуированных вакцин против РНК-вирусов является генетическая нестабильность способного к репликации вакцинного штамма. К недостаткам живых аттенуированных вакцин также можно отнести риск контаминации их другими возбудителями или реверсии к исходному вирусу дикого типа. Кроме того, затраты на поддержание холодовой цепи в тропических странах составляют почти 80% от стоимости вакцины. Поэтому актуальна разработка вакцин, сочетающих положительные характеристики живых аттенуированных вакцин и лишенных их недостатков.

Цель. Представить обзор результатов разработки технологии вакцины против желтой лихорадки на основе инфекционной ДНК, сочетающих преимущества вакцин на основе депротеинизированной ДНК и живых аттенуированных вакцин.

Вывод. Если дальнейшие испытания пройдут успешно, то данный подход сможет кардинальным образом изменить процесс производства вакцин и иммунопрофилактику в целом.

Об авторах

P. Pushko
Medigen, Inc., Frederick, MD
Соединённые Штаты Америки

Петер Пушко – Отдел вирусологии, 

Форт Детрик, Фредерик, MD 21702, США



А. А. Ишмухаметов
ФГБНУ «Федеральный научный центр исследований и разработки иммунобиологических препаратов им. М. П. Чумакова РАН», Москва; ФГАОУ ВО Первый Московский государственный медицинский университет им. И. М. Сеченова МЗ России
Россия

Айрат Айратович Ишмухаметов – д.м.н., профессор, член корреспондент РАН, генеральный директор;  заведующий кафедрой Организации и технологии производства иммунобиологических препаратов 

108819, город Москва, поселение Московский, поселок Института полиомиелита, домовладение 8, корпус 1, тел. 8(495) 841–90–02, факс 8(495) 549–67–60

 

 





P. P. Вredenbeek
Department of Medical Microbiology, Center of Infectious Diseases, Leiden University Medical Center, Leiden
Нидерланды

Петер Дж. Бреденбеек – доцент кафедры медицинской микробиологии У

Ялелаан 1, 3508 TД Утрехт, Главный корпус, Альбинус Драйв 2, 2333 ЗА Лейден, Номер комнаты L4-54. +31 71 526 1655



I. S. Lukashevich
Department of Pharmacology and Toxicology, School of Medicine, Center for Predictive Medicine for Biodefense and Emerging Infectious Diseases, NIH Regional Biocontainment Laboratory, University of Louisville
Соединённые Штаты Америки

Игорь Сергеевич Лукашевич – д.м.н., профессор Кафедры фармакологии и токсикологии медицинского факультета

Ул. East Chestnu 323, Университет Луисвилля, Луисвилл, Kентукки 40202.



Список литературы

1. Lauring AS, Jones JO, Andrino R. Rationalizing the development of live attenuated vaccines. Nature Biotechnology. 2010;28(5):573–579.

2. Rice CM, Lenches EM, Eddy SR, et al. Nucleotide sequence of yellow fever virus: implications for flavivirus gene expression and evolution. Science. 1985;229(4715):726–733.

3. Hahn C, Dalrymple JM, Strauss JH, et al. Comparison of the virulent Asibi strain of yellow fever virus with the17D vaccine strain derived from it. Proc Natl Acad Sci USA.1987;84(7):2019–2023.

4. dos Santos C, Post PR, Carvalho R, et al. Complete nucleotide sequence of yellow fever virus vaccine strains 17DD and 17D-213. Virus Res. 1995;35(1):35–41.

5. Li L, Saade F, Petrovsky N. The future of human DNA vaccines. J Biotechnol. 2012;162(2-3):171–182.

6. Kutzler MA, Weiner DB. DNA vaccines: ready to prime? Nat Rev Genet. 2008;9(10):776–788.

7. Wolff JA, Malone RW, Williams P, et al. Direct gene transfer into mouse muscle in vivo. Science. 1990;247(4949):1465–1468.

8. Alonso M, Leong JAC. Licensed DNA vaccines against infectious hematopoietic necrosis virus (IHNV). Recent Pat DNA Gene Seq. 2013;7(1):62–65.

9. Senovilla L, Vacchelli E, Garcia P, et al. Trial watch: DNA vaccines for cancer therapy. Oncoimmunology. 2013;2(4):e23803.

10. Pol J, Bloy N, Obrist F, et al. Trial watch DNA vaccines for cancer therapy. Oncoimmunology. 2014;3(4):e28185.

11. Bredenbeek P, Molenkamp R, Spaan W, et al. A recombinant yellow fever 17D vaccine expressing Lassa virus glycoproteins. Virology. 2006;345(2):299–304.

12. Jiang X, Dalebout T, Pushko P, et al. Towards a DNA based recombinant Yellow fever/Lassa vaccine [abstract]. In: The 28th ASV meeting, Vancouver, BC. 2009;W49-1:21.2

13. Jiang X, Dalebout TJ, Bredenbeek PJ, et al. Yellow fever 17D-vectored vaccines expressing Lassa virus GP1 and GP2 glycoproteins provide protection against fatal disease in guinea pigs. Vaccine. 2011;29(6):1248–1257.

14. Carrion RJ, Bredenbeek P, Jiang X, et al. Vaccine platforms to control arenaviral hemorrhagic fevers. J Vaccines Vaccination. 2012;3(7):160.

15. Gordon W, Rieder E, Mason PW. Plasmid DNA encoding replicating foot-and-mouth disease virus genomes induces antiviral immune responses in swine. J Virol. 1997;71:7442–7447.

16. Hall RA, Nisbet DJ, Pham KB, et al. DNA vaccine coding for the full-length infectious Kunjin virus RNA protects mice against the New York strain of West Nile virus. Proc Natl Acad Sci USA. 2003;100(18):10460–10464.

17. Yamshchikov V, inventor; University of Kansas assignee. Infectious DNA as a vaccine against west nile and other flaviviruses. United States patent US 7459163B2. 2008 Dec 2.

18. Tretyakova I, Lukashevich IS, Glass P, et al. Novel vaccine against Venezuelan equine encephalitiscombines advantages of DNA immunization and a live attenuated vaccine. Vaccine. 2013; 31(7):1019–1025.

19. Tretyakova I, Hearn J, Wang E, et al. DNA vaccine initiates replication of live attenuated chikungunya virus in vitro and elicits protective immune response in mice. J Infect Dis. 2014;209(12):1882–1890.

20. Pushko P, Lukashevich I, inventors; Medigen, inc. assignee. IDNA vaccines and methods for using the same. United States patent US 8691563. 2014 April 8.

21. Monath TP. Yellow fever vaccine. In: Plotkin SA, Orenstein WA, editors. Vaccines. 4th ed. PA: Saunders, Philadelphia; 2004. P. 1095–1176.

22. Monath T. Yellow fever vaccine. Expert Rev. Vaccines. 2005;4(4):553–574.

23. Lindenbach BD, Rice CM. Flaviviridae: the viruses and their replication. In: Knipe DM, Howley PM, editors. Fields virology. Philadelphia (PA): Lippincott Williams & Wilkins;2001. P. 991–1042.

24. Pugachev KV, Guirakhoo F, Ocran SW, et al. High fidelity of yellow fever virus RNA polymerase. J Virol. 2004;78(2):1032–1038.

25. Monath T. Review of the risks and benefits of yellow fever vaccination including some new analyses. Expert Rev Vaccines. 2012;11(4):427–448.

26. WHO. Vaccines and vaccination against yellow fever. WHO Position Paper, June 2013-Recommendations. Vaccine. 2014. P. S0264-410X(14)00707-5.

27. Querec T, Bennouna S, Alkan S, et al. Yellow fever vaccine YF-17D activates multiple dendritic cell subsets via TLR2,7, 8, and 9 to stimulate polyvalent immunity. J Exp Med.2006;203(2):413–424.

28. Beck A, Tesh RB, Wood TG, et al. Comparison of the live attenuated yellow fever vaccine 17D-204 strain to its virulent parental strain Asibi by deep sequencing. J Infect Dis.2014;209(3):334–344.

29. Tangy F, Despre`s P. Yellow fever vaccine attenuation revealed: loss of diversity. J Infect Dis. 2014; 209(3):318–320.

30. Bredenbeek P, Kooi EA, Lindenbach B, et al. A stable fulllength yellow fever virus cDNA clone and the role of conserved RNA elements in flavivirus replication. J Gen Virol. 2003;84:1261–8.

31. She K. So you want to work with giants: the BAC vector. BioTeach J. 2003;1:69–74.

32. Tretyakova I, Nickols B, Hidajat R, et al. Plasmid DNA Initiates replication of yellow fever vaccine in vitro and elicits virus-specific immune response in mice. Virology. 2014;468:28–35.

33. Meier K, Gardner CL, Khoretonenko MV, et al. A mouse model for studying viscerotropic disease caused by yellow fever virus infection. PLoS Pathog. 2009;5(10):e1000614.

34. Тhibodeaux B, Garbino NC, Liss NM, et al. A small animal peripheral challenge model of yellow fever using interferon-receptor deficient mice and the 17D-204 vaccine strain. Vaccine. 2012;30(21):3180–3187.

35. Neves P, Matos DC, Marcovistz R, et al. TLR expression and NK cell activation after human yellow fever vaccination. Vaccine. 2009;27(41):5543–5549.

36. Neves P, Santos JR, Tubarao LN, et al. Early IFN-gamma production after YF 17D vaccine virus immunization in mice and its association with adaptive immune responses. PLoS One. 2013;8(12).


Для цитирования:


Pushko P., Ишмухаметов А.А., Вredenbeek P.P., Lukashevich I.S. Экспериментальные живые аттенуированные вакцины против жёлтой лихорадки на основе инфекционных ДНК. Эпидемиология и Вакцинопрофилактика. 2019;18(1):18-25. https://doi.org/10.31631/2073-3046-2019-18-1-18-25

For citation:


Pushko P., Ishmukhametov А.А., Bredenbeek P.P., Lukashevich I.S. Experimental DNA-Launched Live-Attenuated Vaccines Against Yellow Fever. Epidemiology and Vaccinal Prevention. 2019;18(1):18-25. (In Russ.) https://doi.org/10.31631/2073-3046-2019-18-1-18-25

Просмотров: 173


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 2073-3046 (Print)
ISSN 2619-0494 (Online)