Preview

Эпидемиология и Вакцинопрофилактика

Расширенный поиск

Повышение иммуногенной и протективной активности вакцинного штамма Yersinia pestis EV НИИЭГ в условиях культивирования с азоксимером бромида (полиоксидонием)

https://doi.org/10.31631/2073-3046-2021-20-6-12-19

Полный текст:

Аннотация

Актуальность. Для профилактики чумы в России используют вакцину чумную живую на основе вакцинного штамма Yersinia pestis EV НИИЭГ, вызывающую развитие иммунитета длительностью до 1 года, что обусловливает необходимость проведения ежегодной ревакцинации прививаемого контингента. Разработка новых способов усиления иммуногенности вакцинного штамма Y. pestis EV НИИЭГ является актуальной задачей. Цель – изучение влияния иммуноадъюванта азоксимера бромида (полиоксидония, ПО) на иммунобиологические свойства Y. pestis EV НИИЭГ в условиях культивирования. Материалы и методы. Y. pestis EV НИИЭГ выращивали при 28 °С в течение 48 ч на LB агаре рН 7,2 (Sigma-Aldrich, USA) как с ПО, так и без. Снятие масс-спектров экстрактов клеток Y. pestis EV НИИЭГ проводили на масс-спектрометре MicroflexТМ LT (Bruker Daltonics, Германия). Протективные свойства оценивали в условиях моделирования чумной инфекции по интегральному показателю ImD50 на морских свинках и мышах BALB\c при заражении вирулентными штаммами основного подвида Y. pestis 231, Y. pestis Р–13268 Вьетнам. Иммуногенность – по уровню антител к F1 чумного микроба методом ТИФА. Результаты и обсуждение. Внесение ПО в среду культивирования вызывает достоверное повышение иммуногенности вакцинного штамма Y. pestis EV НИИЭГ, сопровождающееся ростом продукции антител к капсульному антигену F1 чумного микроба и выраженным усилением защитного действия вакцинного штамма Y. pestis EV линии НИИЭГ при моделировании бубонной формы чумы на двух видах экспериментальных животных– мышах линии BALB\c и морских свинках. Зарегистрировано значимое (р < 0,05) уменьшение величины ImD50 для культур вакцинного штамма Y. pestis EV линии НИИЭГ, выращенных на среде с добавлением ПО, по сравнению с ImD50 для Y. pestis EV НИИЭГ в стандартных условиях культивирования. Выводы. Выявлены изменения количественных и качественных характеристик на масс-спектрах Y. pestis EV НИИЭГ, выращенного на среде с ПО, сопровождавшиеся повышением его иммуногенной и протективной активности. Морфологические исследования подтверждают отсутствие влияния ПО на безвредность вакцинного штамма.

Об авторах

Т. Н. Щуковская
ФКУЗ Российский научно-исследовательский противочумный институт «Микроб» Роспотребнадзора
Россия

Татьяна Николаевна Щуковская – д. м. н., профессор, главный научный сотрудник отдела иммунологии

Саратов
Тел. +7 (909) 330-25-83



А. Ю. Гончарова
ФКУЗ Российский научно-исследовательский противочумный институт «Микроб» Роспотребнадзора
Россия

Анастасия Юрьевна Гончарова – к. м. н., научный сотрудник отдела иммунологии

Саратов
Тел. +7 (927) 110-83-55



С. А. Бугоркова
ФКУЗ Российский научно-исследовательский противочумный институт «Микроб» Роспотребнадзора
Россия

Светлана Александровна Бугоркова – д. м. н., и.о. зав. отделом иммунологии

Саратов



О. М. Кудрявцева
ФКУЗ Российский научно-исследовательский противочумный институт «Микроб» Роспотребнадзора
Россия

Ольга Михайловна Кудрявцева  – к. б. н., старший научный сотрудник отдела иммунологии

Саратов
Тел. +7 (905) 369-71-99



Н. Е. Щербакова
ФКУЗ Российский научно-исследовательский противочумный институт «Микроб» Роспотребнадзора
Россия

Наталья Евгеньевна Щербакова  – научный сотрудник отдела диагностики инфекционных болезней

Саратов
Тел. +7 (8452) 51-52-11



А. С. Абдрашитова
ФКУЗ Российский научно-исследовательский противочумный институт «Микроб» Роспотребнадзора
Россия

Адиля Саберьжановна Абдрашитова  – к. б. н., ведущий научный сотрудник отдела диагностики инфекционных болезней

Саратов
Тел. +7 (8452) 51-52-11



Список литературы

1. О состоянии санитарно-эпидемиологического благополучия населения в Российской Федерации в 2019 году: Государственный доклад. М.: Федеральная служба по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека, 2020. 299 с.

2. Shi L., Yang G., Zhang Z., et al. Reemergence of human plague in Yunnan, China in 2016 // PLoS ONE. 2018. Vol. 13, N 6:e0198067. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0198067

3. Kehrmann J., Popp W., Delgermaa B., et al. Two fatal cases of plague after consumption of raw marmot organs. Emerg Microbes Infect. 2020. Vol. 9, N 1. P. 1878–1880. Doi:10.1080/22221751.2020.1807412

4. Профилактика чумы. Санитарно-эпидемиологические правила СП 3.1.7.3465-17. Бюллетень нормативных и методических документов Госсанэпиднадзора. 2017. № 4. С. 3–21.

5. WHO Workshop Meeting Report «Efficacy trials of Plague Vaccines: endpoints, trial design, site selection». 2018, INSERM, Paris, 12 p. https://www.who.int/blueprint/what/norms-standards/PlagueVxeval_FinalMeetingReport.pdf?ua=1.

6. Demeure C.E., Dussurget O., Fiol G.M., et al. Yersinia pestis and plague: an updated view on evolution, virulence determinants, immune subversion, vaccination, and diagnostics // Genes and Immunity. 2019. Vol. 20. P. 357–370. https://doi.org/10.1038/s41435-019-0065-0

7. Балахонов С. В., Попова А. Ю., Мищенко А. И. и др. Случай заболевания человека чумой в Кош-Агачском районе Республике Алтай в 2015 г. Сообщение 1. Клинико-эпидемиологические и эпизоотологические аспекты. Проблемы особо опасных инфекций. 2016. № 1. С. 55–60. DOI:10.21055/0370-1069-2016-1-55-60

8. Петров Р. В., Хаитов Р. М., Некрасов А. В. и др. Полиоксидоний: Механизм действия и клиническое применение. Медицинская иммунология. 2000. Т. 2, № 3. С. 271–278.

9. Омельченко Н. Д., Иванова И. А., Беспалова И. А., Филиппенко А. В. Иммуномодуляторы и специфическая профилактика инфекционных болезней. Проблемы особо опасных инфекций. 2017. № 3. С. 21–26. DOI:10.21055/0370-1069-2017-3-21-2.

10. Щуковская Т. Н., Курылина А. Ф., Шавина Н. Ю., Бугоркова С. А. Влияние полиоксидония, Poly(I:C), даларгина на защитное действие вакцинного штамма Yersinia pestis EV НИИЭГ при экспериментальной чуме. Российский иммунологический журнал. 2020. Т. 23, № 1. С. 41–50. https://doi.org/10.46235/1028-7221-005-IOP.

11. Безопасность работы с микроорганизмами I–II групп патогенности (опасности): Санитарно-эпидемиологические правила СП 1.3.3118-13. М.: Федеральный центр гигиены и эпидемиологии Роспотребнадзора. 2014. https://www.garant.ru/products/ipo/prime/doc/70563038/

12. World Health Organization. Vaccine Supply and Quality Unit. Manual of laboratory methods for testing of vaccines used in the WHO Expanded Programme on Immunization. World Health Organization. ‎1997. 221 p. https://apps.who.int/iris/handle/10665/63576

13. МУ 3.3.1.1113-02. Основные требования к вакцинным штаммам чумного микроба: Методические указания. М.: Минздрав России. 2002.. DOI:10.13140/RG.2.1.1468.6246

14. Ашмарин И. П., Воробьев А. А. Статистические методы в микробиологических исследованиях. Л.: Медгиз; 1962. https://search.rsl.ru/ru/record/01005954123.

15. Коржевский Д. Э., Гиляров А. В. Основы гистологической техники. СПб:СпецЛИТ; 2010.

16. Использование метода времяпролетной масс-спектрометрии с матрично-активированной лазерной десорбцией/ионизацией (MALDI-ToF MS) для индикации и идентификации возбудителей I–II групп патогенности: Методические рекомендации. М.: Федеральный центр гигиены и эпидемиологии Роспотребнадзора. 2015. https://www.rospotrebnadzor.ru/documents/details.php?ELEMENT_ID=4693

17. Некрасов А. В., Пучкова Н. Г. Полиоксидоний: основы синтеза и свойства // Иммунология. 2002. Т. 23, № 6. С. 329–333.

18. Пинегин Б. В., Некрасов А. В., Хаитов Р. М. Иммуномодулятор полиоксидоний: механизмы действия и аспекты клинического применения // Цитокины и воспаление. 2004. Т. 3, № 3. С. 41–47.

19. Пономарева Т. С., Дерябин П. Н., Каральник Б. В. и др. Влияние полиоксидония на иммуногенную и протективную активность живой чумной вакцины // Иммунология. 2014. Т. 35, № 5. С. 286–290.

20. Chauvaux S., Dillies M.A., Marceau M., et al. In silico comparison of Yersinia pestis and Yersinia pseudotuberculosis transcriptomes reveals a higher expression level of crucial virulence determinants in the plague bacillus. International Journal of Medical Microbiology. 2011. Vol. 301, N 2. P. 105–116. doi:10.1016/j.ijmm.2010.08.013.

21. Спицын А. Н., Уткин Д. В., Щербакова Н. Е. и др. MALDI-TOF масс-спектрометрический анализ штаммов возбудителя чумы. Проблемы особо опасных инфекций. 2016. № 2. С. 91–94. https://doi.org/10.21055/0370-1069-2016-2-91-94

22. Котенева Е. А., Котенев Е. С., Калинин А. В. и др. Протеомное профилирование штаммов Yersinia pestis, циркулирующих на территории природных очагов Северного Кавказа и Закавказья. Журн. микробиол. 2019. № 4. С. 18–25. https://doi.org/10.36233/0372-9311-2019-4-18-25


Рецензия

Для цитирования:


Щуковская Т.Н., Гончарова А.Ю., Бугоркова С.А., Кудрявцева О.М., Щербакова Н.Е., Абдрашитова А.С. Повышение иммуногенной и протективной активности вакцинного штамма Yersinia pestis EV НИИЭГ в условиях культивирования с азоксимером бромида (полиоксидонием). Эпидемиология и Вакцинопрофилактика. 2021;20(6):12-19. https://doi.org/10.31631/2073-3046-2021-20-6-12-19

For citation:


Shchukovskaya T.N., Goncharova A.Y., Bugorkova S.A., Kudryavtseva O.M., Shcherbakova N.E., Abdrashitova A.S. Enhancement of the Yersinia pestis EV NIIEG Vaccine Srain Immunogenic and Protective Activity under Cultivation with Azoxymer Bromide (Polyoxidonium). Epidemiology and Vaccinal Prevention. 2021;20(6):12-19. (In Russ.) https://doi.org/10.31631/2073-3046-2021-20-6-12-19

Просмотров: 117


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 2073-3046 (Print)
ISSN 2619-0494 (Online)