Влияние иммуномодуляторов на реактивность клеток иммунной системы при моделировании противотуляремийного вакцинного процесса
https://doi.org/10.31631/2073-3046-2016-15-3-94-101
Аннотация
Ключевые слова
вакцинный штамм Francisella tularensis 15 НИИЭГ,
полиоксидоний,
даларгин,
проточная цитометрия,
апоптоз,
пролиферация,
ядрышковый организатор (AgNOR),
антитела,
vaccine strain Francisella tularensis 15 NIIEG,
polyoxidonium,
dalargin,
flow cytometry,
apoptosis,
proliferation,
nucleolar organizer (AgNOR),
antibodies
Об авторах
А. Л. Кравцов
ФКУЗ «РосНИПЧИ «Микроб» Роспотребнадзора
Россия
Россия
С. Н. Клюева
ФКУЗ «РосНИПЧИ «Микроб» Роспотребнадзора
Россия
Россия
С. А. Бугоркова
ФКУЗ «РосНИПЧИ «Микроб» Роспотребнадзора
Россия
Россия
Список литературы
1. Саяпина Л.В., Соловьев Е.А., Горяев А.А., Бондарев В.П. Изучение иммунобиологических свойств вакцинного штамма Francisella tularensis 15 НИИЭГ в условиях длительного хранения. Проблемы особо опасных инфекций. 2015; 2: 87 - 91.
2. Каральник Б.В., Пономаре ва Т.С., Дерябин П.Н., Денисова Т.Г., Мельникова Н.Н., Тугамбаев Т.И. и др. Влияние иммуномодуляции на иммуногенную и протективную активность живой чумной вакцины. Журнал микробиол. 2014; 6: 108 - 112.
3. Клюева С.Н., Щуковская Т.Н. Влияние адъювантов нового поколения in vitro на продукцию цитокинов клетками крови вакцинированных против чумы лиц. Российский иммунологический журнал. 2015; 9 (2): 201 - 208.
4. Ляпина А.М., Полянина Т.И., Ульянова О.В., Елисеев Ю.Ю., Телепнев М.В., Мотин В.Л., Федорова В.А. Применение полиоксидония для получения специфических антител к бактериальным антигенам. Современные проблемы науки и образования. 2012;
5. Киселева Е.П. Новые представления о противоинфекционном иммунитете. Инфекция и иммунитет. 2011; 1: 9 - 14.
6. Silva M.T. When two is better than one: macrophages and neutrophils work in concert in innate immunity as complementary and cooperative partners of a myeloid phagocyte system. J. Leukocyte Biology. 2010; 87: 1 - 14.
7. Pham C.T. Neutrophil serine proteases fine-tune the inflammatory response. Int. J. Biochem. Cell Biol. 2008; 40 (6 - 7): 1317 - 1333.
8. Пинегин Б.В., Некрасов А.В., Хаитов Р.М. Иммуномодулятор полиоксидоний: механизмы действия и аспекты клинического применения. Цитокины и воспаление. 2004; 3: 41 - 47.
9. Балачевский Б.В., Курзанов А.Н., Славинский А.А. Даларгин-индуцируемая модуляция функционально-метаболической активности нейтрофильных лейкоцитов. Успехи современного естествознания. 2008; 5: 75 - 77.
10. Silva T.M., do Vale A., dos Santos N.M. Secondary necrosis in multicellular animals: an outcome of apoptosis with pathogenic implications. Apoptosis. 2008; 13: 463 - 482.
11. Mares C.A., Ojeda S.S., Morris E.G., Li Q., Teale J.M. Initial delay in the immune response to Francisella tularensis is followed by hypercytokinemia characteristic of severe sepsis and correlating with upregulation and release of demage-associated molecular patterns. Infec. Immunity.2008; 76: 3001 - 3010.
12. Фримель Х. Иммунологические методы. Москва. Медицина; 1987: 472.
13. Сибиряк С.В., Хайдуков С.В., Зурочка А.В. Оценка апоптоза в иммунологических исследованиях. Вопросы современной проточной цитометрии. Клиническое применение. Челябинск. Бумажный двор; 2008:195.
14. Bi Y., Du Z., Yang H. Guo Z., Tan Y., Zhu Z., Yang R. Reduced apoptosis of mouse macrophages induced by yscW mutant of Yersinia pestis results from the reduced secretion of YopJ and relates to caspase-3 signal pathway. Scand. J. Immunol. 2009; 70 (4): 358 - 367.
15. Iritani B.M., Eisenman R.N. C-Myc enhances protein synthesis and cell size during B lymphocyte development. PNAS. 1999; 96 (23): 13180 - 13185.
16. Sklar L.A., Oades Z.G., Finnay D.A. Neutrophil degranulation detected by right angle light scattering: spectroscopic methods suitable for simultaneous analysis of degranulation or shape change, elastase realease, and cell aggregation. J. Immunology. 1984; 133 (3): 1483 - 1487.
17. Коржевский Д.Э., Гиляров А.В. Основы гистологической техники. Санкт-Петербург. СпецЛит; 2010: 96.
18. Howell W.M., Black D.A. Controlled silver staining of nucleolus organizer regions with a protective colloidal developer: a one-step method. Experientia. 1980; 36: 1014 - 1015.
19. Бугоркова С.А., Щуковская Т.Н., Курылина А.Ф. Ядрышковый аппарат лимфоцитов - как индикатор функциональной активности лимфоидных органов при доклинической оценке вакцин. Проблемы особо опасных инфекций. 2015; 2: 75 - 78.
20. Комбарова Т.И. Алгоритм отбора и предварительной оценки кандидатов в вакцинные штаммы туляремийного микроба. Автореф.: дис.. канд. биол. наук. Оболенск; 2013.
21. Houghton A.M., Hartzell W.O., Robbins C.S., Gomis-Rth F.X., Shapiro S.D. Macrophage elastase kills bacteria within murine macrophages. Nature Letters. 2009; 460: 637-642.
22. Steen H.B., Boye E. Escherichia coli growth studied by dual parameter flow cytophotometry. J. Bacteriology. 1981; 145 (2): 1091 - 1094.
23. Marohn M.E., Barry E.M. Live attenuated tularemia vaccines: recent developments and future goals. Vaccine. 2013; 31(35):3485-3491. doi: 10.1016/j.
24. Фирстова В.В., Павлов В.М., Горбатов А.А., Комбарова Т.И., Караулов А.В., Дятлов И.А. Формирование антитуляремийного клеточного и гуморального иммунного ответа, индуцированного у мышей F. tularensis 15 НИИЭГ. Иммунология. 2014; 35 (3): 147 - 150.
Рецензия
Для цитирования:
Кравцов А.Л., Клюева С.Н., Бугоркова С.А. Влияние иммуномодуляторов на реактивность клеток иммунной системы при моделировании противотуляремийного вакцинного процесса. Эпидемиология и Вакцинопрофилактика. 2016;15(3):94-101. https://doi.org/10.31631/2073-3046-2016-15-3-94-101
For citation:
Kravtsov A.L., Klyueva S.N., Bugorkova S.A. The impact of Immunomodulators on Reactivity the immune System cells in Model Vaccinal process against Tularemia. Epidemiology and Vaccinal Prevention. 2016;15(3):94-101. (In Russ.) https://doi.org/10.31631/2073-3046-2016-15-3-94-101
Просмотров: 712
Послать статью по эл. почте 