Роль микроскопических грибов в эпизоотологии чумы

Изучены взаимоотношения микроскопических грибов-микромицетов, выделенных из норовых микробиотопов большой песчанки и малого суслика в Урало-Эмбинском междуречье и Ногайской степи, с чумным микробом и переносчиками чумы. Из 74 штаммов микромицетов 78,4% оказывали антагонистическое действие в отношении 1-5 штаммов Y.pestis, а грибы Aspergillus versicolor, A. clavatus, A.sulfureus, Mucor racematus, Penicillium baarnensens, P. sp. бл. к P.charlesii, P. sp. бл. к P. martensii, P. insectus, P. chrysogenum ингибировали рост всех 5-ти тест-штаммов чумного микроба. Высокая антибиотическая активность метаболитов грибов сочеталась с их инсектицидным действием в отношении блох Xenopsylla skrjabini. Микроскопические грибы P. funiculosum, P. cyclopium, P. chrisogenum, P. charlesii, P. canescens, A. versicolor вызывали 100% гибель блох на 4-6 сутки. В результате заражения чумой насекомых, предварительно обработанных конидиями гриба P. funiculosum, их способность к блокообразованию снизилась в 14 раз, а количество микробных клеток Y. pestis через 12 суток наблюдения уменьшилось в 25-33 раза. Предполагается, что в природных очагах чумы микромицеты могут играть важную роль, внося коррективы в эпизоотическую активность переносчиков и возбудителей чумы.

микроскопические грибы-микромицеты, токсины, антибиотики, переносчики чумы, блокообразование, чумной микроб, microscopic fungi-micromycetes, toxins, antibiotics, plague vectors, block formation, plague microbe

1. Mollaret H. Conservation experimental de la pestedans le sol.Bull.Soc.Pathol. Exot.1963; 56: 1168-1183.

2. Бренева Н. В., Марамович А. С. Моделирование взаимодействия Y. pestis и Tetraeymenapyriformis в эксперименте. ЖМЭИ. 2008; 5: 39-41.

3. Базанова Л. П. Взаимоотношения чумного микроба (Ypestis) и блох (Siphoptera) на примере сибирских природных очагов чумы. Автореф. дис.. д-ра биол. наук. 2010: 45.

4. Бренева Н. В., Марамович А. С. Климов В. Т. Клональная структура популяций Y. pestis в экспериментальных почвенных экосистемах MAX. ЖМЭИ. 2007; 1: 12-16.

5. Каримова Т. Ю. Неронов В. М., Попов В. П. Развитие взглядов на природную очаговость чумы. Зоологич. журнал. 2010; 1 (89): 71-78.

6. Видяева Н. А.,Ерошенко Г. А., Шавина Н. Ю., Кузнецова Д. С., Кутырев В. В. Формирование биопленки штамма Y. pestis основного и неосновных подвидов Y.pseulotuberculosis на модели Caendrhabditis elegans. Проблемы ООИ. 2009; 1 (99): 31-34.

7. Попов Н. В., Кошель Е. И., Ерошенко Г. А., Кутырев В. В. Формирование современных представлений о механизме энзоотии чумы. Проблемы ООИ. 2011; 3(109): 5-7.

8. Удовиков Л.И. Динамика эпизоотической активности природных очагов чумы Европейского Юго-Востока России; прогноз на начало 21 столетия. Автореф. дис.. д-ра биол. наук.; 2010: 21.

9. Кошель Е. И.,Ерошенко Е. А., Анисимова Л. В.,Новичкова Л. А., Широков А. А., Бурова А. И. и др. Оценка длительности сохранения штаммов Y. pestis в клетках почвенных амеб Acfntthamoeba sp. В экспериментальных условиях. ЖМЭИ. 2016; 2: 60-74.

10. Иннокентьева Т.И. Особенности экологии Y. pestis altaica. Автореф. дис.. д-ра мед. наук.; 1997: 59.

11. Литвин В. Ю., Сомов Г. П., Пушкарева В. Н. Сапронозы как природно-очаговые болезни. Эпидемиология и Вакцинопрофилактика. 2010; 1 (50): 10-16.

12. Лопатина Н. В., Сорокина Л. Я, Турчинов Г. Я. Штамм Рenicillium funiculosum, используемый для борьбы с блохами-переносчиками чумы. Авт. свидетельство СССР № 1005462. БИ 1984; 24: 1988.

13. Поляков И. В., Соколова Н. С. Практическое пособие по медицинской статистике. Ленинград: Медицина; 1975: 149.

14. Алмагамбетов К. Х. Биотехнология микроорганизмов. Астана; 2008: 244.

15. Лопатина Н. В., Цыбин Б. П., Брюханова А. А., Лунина Е. А., Осипова С. П. Влияние энтомопатогенного гриба Р. funiculosum на размножение возбудителя чумы в организме блох. Мед. паразитол. и паразитарные болезни.1988; 3: 28 -29

16. Schlein Y., Jacobson R. L., Yuval B. Mycoses, bacterial infections and antibacterial activity in Sandflies (Ssychodidae) and their possible role in the transmission of Leishmaniasis. Parasitology. 1985; 90 (1): 57-67.