Внутрибольничные вспышки инвазивного кандидоза: обзор литературы и обобщение эпидемиологических данных
А. В. Любимова,
А. Ю. Алексеев,
Н. В. Васильева,
Т. С. Богомолова,
Ю. В. Борзова,
Е. А. Лебедева,
А. С. Мохов https://doi.org/10.31631/2073-3046-2026-26-2-112-123
Аннотация
Введение. Высокая частота госпитализаций иммунокомпрометированных пациентов, использование инвазивных устройств и применение антибактериальных лекарственных средств способствуют внутрибольничному распространению возбудите- лей инвазивного кандидоза (ИК), в том числе возникновению внутрибольничных вспышек.
Цель исследования – выявить эпидемиологические характеристики внутрибольничных вспышек инвазивного кандидоза, вызванных различными видами дрожжевых грибов, и обобщить данные о мерах по их купированию на основании опубликованных данных.
Материалы и методы. Проанализированы данные о вспышках, опубликованных в онлайн-базах данных (Outbreak Database, PubMed, eLibrary). Поиск проводился по ключевым словам: «Candida», «вспышка», «внутрибольничные» и «инфекции, связанные с оказанием медицинской помощи» за период 1977–2025 гг.
Результаты. В обзор включены 82 вспышки. Выявлены изменения в этиологии опубликованных вспышек – от превалирования C. albicans к преобладанию C. parapsilosis, и с 2016 года – С. auris (Candidozyma auris). Вспышки, вызванные C. auris и C. parapsilosis, характеризовались длительным периодом до их купирования и большим спектром факторов передачи. Вспышки, вызванные резистентными к флуконазолу штаммами, были связаны с высокой летальностью и продолжительностью. Основными факторами передачи являлись руки медицинского персонала и растворы для парентерального питания. Наиболее эффективные меры контроля включали: эпидемиологическое наблюдение, контроль за гигиеной рук, качественную дезинфекцию объектов внешней среды, изоляционно-ограничительные мероприятия и дополнительные стратегии для C. auris.
Заключение. Внутрибольничные вспышки ИК различаются по продолжительности, летальности и особенностям внутрибольничного распространения в зависимости от вида возбудителя и его чувствительности к противогрибковым препаратам. Эффективность их предупреждения и купирования зависит от сво- евременного выявления колонизированных и инфицированных пациентов, видовой идентификации возбудителя и выбора противоэпидемических мер с учетом вида возбудителя.
Об авторах
А. В. Любимова
ФГБОУ ВО «Северо-Западный государственный медицинский университет им. И.И. Мечникова» Минздрава России
Россия
Россия
Любимова Анна Викторовна, д. м. н., профессор, профессор кафедры эпидемиологии, паразитологии и дезинфектологии
191015, Санкт-Петербург, ул. Кирочная, д. 41
А. Ю. Алексеев
ФГБОУ ВО «Северо-Западный государственный медицинский университет им. И.И. Мечникова» Минздрава России
Россия
Россия
Андрей Юрьевич Алексеев – аспирант кафедры эпидемиологии, паразитологии и дезинфектологии, м. н. с. НИЛ микологического мониторинга и биологии грибов НИИ медицинской микологии им. П.Н. Кашкина
Санкт-Петербург
Н. В. Васильева
ФГБОУ ВО «Северо-Западный государственный медицинский университет им. И.И. Мечникова» Минздрава России
Россия
Россия
Наталья Всеволодовна Васильева – д. б. н., профессор, директор Научно-исследовательского института медицинской микологии им. П. Н. Кашкина, зав. кафедрой медицинской микробиологии
Санкт-Петербург
Т. С. Богомолова
ФГБОУ ВО «Северо-Западный государственный медицинский университет им. И.И. Мечникова» Минздрава России
Россия
Россия
Татьяна Сергеевна Богомолова – к. б. н., заведующая НИЛ микологического мониторинга и биологии грибов НИИ медицинской микологии им. П.Н. Кашкина, доцент кафедры медицинской микробиологии
Санкт-Петербург
Ю. В. Борзова
ФГБОУ ВО «Северо-Западный государственный медицинский университет им. И.И. Мечникова» Минздрава России
Россия
Россия
Юлия Владимировна Борзова – к. м. н., заведующая микологической клиникой, доцент кафедры медицинской микробиологии
Санкт-Петербург
Е. А. Лебедева
ФГБОУ ВО «Северо-Западный государственный медицинский университет им. И.И. Мечникова» Минздрава России
Россия
Россия
Екатерина Андреевна Лебедева – к. м. н., ассистент кафедры эпидемиологии, паразитологии и дезинфектологии
Санкт-Петербург
А. С. Мохов
ФГБОУ ВО «Северо-Западный государственный медицинский университет им. И.И. Мечникова» Минздрава России
Россия
Россия
Алексей Сергеевич Мохов – к. м. н., ассистент кафедры эпидемиологии, паразитологии и дезинфектологии
Санкт-Петербург
Список литературы
1. Alenazy H, Alghamdi A, Pinto R, et al. Candida colonization as a predictor of invasive candidiasis in non-neutropenic ICU patients with sepsis: A systematic review and metaanalysis // Int J Infect Dis. 2021. Vol. 102. P. 357–362.
2. Huang D, Qi M, Hu Y, et al. The impact of Candida spp airway colonization on clinical outcomes in patients with ventilator-associated pneumonia: A systematic review and meta-analysis // Am J Infect Control. 2020. Vol. 48, N6. P. 695–701.
3. Liu Y, Xu T, Tan Q, et al. Effects of Candida colonization on patients with ventilator-associated pneumonia and pathogenic microorganisms: Systematic review and metaanalysis // Diagn Microbiol Infect Dis. 2025. Vol. 111, N1. P. 116580.
4. Hanna Pharm M., Mazkereth R. Which Patient in the Neonatal Intensive Care Unit should Receive Antifungal Prophylaxis Therapy? // Isr Med Assoc J. 2021. Vol. 23, N2. P. 116–120.
5. Manzoni P, Jacqz-Aigrain E, Rizzollo S, et al. Antifungal prophylaxis in neonates // Early Hum Dev. 2011. Vol. 87. Suppl 1. P. S59–60.
6. De Mol W, Bos S, Beeckmans H, et al. Antifungal Prophylaxis After Lung Transplantation: Where Are We Now? // Transplantation. 2021. Vol. 105, N12. P. 2538–2545.
7. Wang J, Zhou M, Xu JY., et al. Comparison of Antifungal Prophylaxis Drugs in Patients With Hematological Disease or Undergoing Hematopoietic Stem Cell Transplantation: A Systematic Review and Network Meta-analysis // JAMA Netw Open. 2020. Vol. 3, N10. P. e2017652.
8. Rajadurai SG, Maharajan MK, Veettil SK, et al. Comparative Efficacy and Safety of Antifungal Agents in the Prophylaxis of Oropharyngeal Candidiasis among HIV-Infected Adults: A Systematic Review and Network Meta-Analysis // Life (Basel). 2022. Vol. 12, N4. P. 515.
9. Vonberg RP, Weitzel-Kage D, Behnke M, Gastmeier P. Worldwide Outbreak Database: the largest collection of nosocomial outbreaks // Infection. 2011. Vol. 39, N1. P. 29–34.
10. Belkin A, Gazit Z, Keller N, et al. Candida auris Infection Leading to Nosocomial Transmission, Israel, 2017 // Emerg Infect Dis. 2018. Vol. 24, N4. P. 801–804.
11. Biswal M, Rudramurthy SM, Jain N, et al. Controlling a possible outbreak of Candida auris infection: lessons learnt from multiple interventions // J Hosp Infect. 2017. Vol. 97, N4. P. 363–370.
12. Ruiz-Gaitán A, Moret AM, Tasias-Pitarch M, et al. An outbreak due to Candida auris with prolonged colonisation and candidaemia in a tertiary care European hospital // Mycoses. 2018. Vol. 61, N7. P. 498–505.
13. Eyre DW, Sheppard AE, Madder H, et al. A Candida auris Outbreak and Its Control in an Intensive Care Setting // N Engl J Med. 2018. Vol. 379, N14. P. 1322–1331.
14. Didik T, Yau AP, Cheung HL, et al. Long-range air dispersion of Candida auris in a cardiothoracic unit outbreak in Hong Kong // J Hosp Infect. 2023. Vol. 142. P. 105–114.
15. Di Lorenzo A, Triggiano F, Lopuzzo M, et al. Candida auris cluster in a large third level Italian hospital: a case series // IJID Reg. 2024. Vol. 13. P. 100468.
16. Welbel SF, McNeil MM, Kuykendall RJ, et al. Candida parapsilosis bloodstream infections in neonatal intensive care unit patients: epidemiologic and laboratory confirmation of a common source outbreak // Pediatr Infect Dis J. 1996. Vol. 15, N11. P. 998–1002.
17. Любимова А.В., Зуева Л.П., Соколова Г.А., и др. Вспышка внутрибольничного кандидоза в гематологическом отделении // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 1997. №1. С. 23–26.
18. McCray E, Rampell N, Solomon SL, et al. Outbreak of Candida parapsilosis endophthalmitis after cataract extraction and intraocular lens implantation // J Clin Microbiol. 1986. Vol. 24, N4. P. 625–628.
19. Solomon SL, Khabbaz RF, Parker RH, et al. An outbreak of Candida parapsilosis bloodstream infections in patients receiving parenteral nutrition // J Infect Dis. 1984. Vol. 149, N1. P. 98–102.
20. Plouffe JF, Brown DG, Silva J Jr, et al. Nosocomial outbreak of Candida parapsilosis fungemia related to intravenous infusions // Arch Intern Med. 1977. Vol. 137, N12. P. 1686–1689.
21. Greaves I, Kane K, Richards NT, et al. Pigeons and peritonitis? // Nephrol Dial Transplant. 1992. Vol. 7, N9. P. 967–969.
22. Qi L, Fan W, Xia X, et al. Nosocomial outbreak of Candida parapsilosis sensu stricto fungaemia in a neonatal intensive care unit in China // J Hosp Infect. 2018. Vol. 100, N4. P. e246–e252.
23. Thomaz DY, de Almeida JN Jr, Sejas ON, et al. Environmental Clonal Spread of Azole-Resistant Candida parapsilosis with Erg11-Y132F Mutation Causing a Large Candidemia Outbreak in a Brazilian Cancer Referral Center // J Fungi (Basel). 2021. Vol. 7, N4. P. 259.
24. Aldejohann AM, Wiese-Posselt M, Gastmeier P, et al. Expert recommendations for prevention and management of Candida auris transmission // Mycoses. 2022. Vol. 65, N6. P. 590–598.
25. Jang SJ, Han HL, Lee SH, et al. PFGE-based epidemiological study of an outbreak of Candida tropicalis candiduria: the importance of medical waste as a reservoir of nosocomial infection // Jpn J Infect Dis. 2005. Vol. 58, N5. P. 263–267.
26. Yuen KY, Seto WH, Ching TY, et al. An outbreak of Candida tropicalis peritonitis in patients on intermittent peritoneal dialysis // J Hosp Infect. 1992. Vol. 22, N1. P. 65–72.
27. Chowdhary A, Becker K, Fegeler W, et al. An outbreak of candidemia due to Candida tropicalis in a neonatal intensive care unit // Mycoses. 2003. Vol. 46, N8. P. 287–292.
28. Viviani MA, Cogliati M, Esposto MC, et al. Four-year persistence of a single Candida albicans genotype causing bloodstream infections in a surgical ward proven by multilocus sequence typing // J Clin Microbiol. 2006. Vol. 44, N1. P. 218–221.
29. Campbell JR, Zaccaria E, Baker CJ. Systemic candidiasis in extremely low birth weight infants receiving topical petrolatum ointment for skin care: a case-control study // Pediatrics. 2000. Vol. 105, N5. P. 1041–1045.
30. Huang YC, Lin TY, Peng HL, et al. Outbreak of Candida albicans Fungaemia in a Neonatal Intensive Care Unit // Scandinavian Journal of Infectious Diseases. 1998. Vol. 30, N2. P. 137–142.
31. Jung J, Moon YS, Yoo JA, et al. Investigation of a nosocomial outbreak of fungemia caused by Candida pelliculosa (Pichia anomala) in a Korean tertiary care center // J Microbiol Immunol Infect. 2018. Vol. 51, N6. P. 794–801.
32. Kaur H, Shankarnarayana SA, Hallur V, et al. Prolonged Outbreak of Candida krusei Candidemia in Paediatric Ward of Tertiary Care Hospital // Mycopathologia. 2020. Vol. 185, N2. P. 257–268.
33. Bougnoux ME, Brun S, Zahar JR. Healthcare-associated fungal outbreaks: New and uncommon species, New molecular tools for investigation and prevention // Antimicrobial resistance and infection control. 2018. Vol. 7. P. 45.
34. Xin X, Wang M, Li M. Reclassification and Nomenclature of Common Pathogenic Fungi // Advances in Microbiology. 2024. Vol. 14. P. 241–246.
35. Liu F, Hu ZD, Zhao XM, et al. Phylogenomic analysis of the Candida auris-Candida haemuli clade and related taxa in the Metschnikowiaceae, and proposal of thirteen new genera, fifty-five new combinations and nine new species // Persoonia-Molecular Phylogeny and Evolution of Fungi. 2024. Vol. 52, N1. P. 22–43.
36. Bays DJ, Jenkins EN, Lyman M, et al. Epidemiology of Invasive Candidiasis // Clin Epidemiol. 2024. Vol. 16. P. 549–566.
37. Веселов А.В., Мултых И.Г., Клясова Г.А., и др. Эпидемиология возбудителей кандидозов и их чувствительность к азолам: результаты исследования ARTEMIS Disk в России // Клин. микробиол. антимикроб. химиотер. 2005. Т. 7, №1. С. 68–76.
38. Хостелиди С.Н., Козлова О.П., Шадривова О.В., и др. Инвазивные микозы в отделениях реанимации и интенсивной терапии (анализ данных регистров и обзор литературы) // Проблемы медицинской микологии. 2024. Т. 26, №1. С. 3–21.
39. World Health Organization. WHO fungal priority pathogens list to guide research, development and public health action. Geneva: World Health Organization. 2022.
40. Chakrabarti A, Sood P. On the emergence, spread and resistance of Candida auris: host, pathogen and environmental tipping points // J Med Microbiol. 2021. Vol. 70, N3. P. 001318.
41. Welsh RM, Bentz ML, Shams A, et al. Survival, persistence, and isolation of the emerging multidrug-resistant pathogenic yeast Candida auris on a plastic health care surface // J Clin Microbiol. 2017. Vol. 55, N10. P. 2996–3005.
42. Dire O, Amrouch S, Desroches M, et al. Survival of Candida auris on environmental surface materials and low-level resistance to disinfectant // J Hosp Infect. 2023. Vol. 136. P. 80–84.
43. Centers for Disease Control and Prevention. Infection Control Guidance: Candida auris. Atlanta: CDC. 2024.
44. Ahmad S, Asadzadeh M. Strategies to Prevent Transmission of Candida auris in Healthcare Settings // Curr Fungal Infect Rep. 2023. Vol. 17, N1. P. 36–48.
Рецензия
Для цитирования:
Любимова А.В., Алексеев А.Ю., Васильева Н.В., Богомолова Т.С., Борзова Ю.В., Лебедева Е.А., Мохов А.С. Внутрибольничные вспышки инвазивного кандидоза: обзор литературы и обобщение эпидемиологических данных. Эпидемиология и Вакцинопрофилактика. 2026;25(2):112-123. https://doi.org/10.31631/2073-3046-2026-26-2-112-123
For citation:
Liubimova A.V., Alekseev A.Yu., Vasilyeva N.V., Bogomolova T.S., Borzova Yu.V., Lebedeva E.A., Mokho A.S. Nosocomial Outbreaks of Invasive Candidiasis: A Literature Review and Synthesis of Epidemiological Data. Epidemiology and Vaccinal Prevention. 2026;25(2):112-123. (In Russ.) https://doi.org/10.31631/2073-3046-2026-26-2-112-123
Просмотров:
313
JATS XML
Послать статью по эл. почте 