Воздействие антигенного препарата Bacillus anthracis 34F₂ Stemе в сочетании с кобальт-арабиногалактаном на субпопуляционный состав В-лимфоцитов крови (Сообщение 2)

Представлены материалы исследования антигенного препарата S-2 Bacillus anthracis 34F2 Sterne и его сочетанного применения с наноструктурированным кобальт-арабиногалактаном (Со-АГ). Показана способность этих препаратов стимулировать пролиферацию и дифференцировку В-лимфоцитов, содержание которых существенно различается в динамике развития иммунного ответа. Со-АГ проявляет адъювантные свойства, способствующие повышению иммуногенных свойств препарата S-2 B. anthracis 34F₂ Steme, что может указывать на перспективность его применения в качестве адъюванта при конструировании химических вакцин.

сибирская язва, антигены, нанокомпозиты, иммунитет, В-лимфоциты, anthrax, antigen, blood, nanocomposite, immunity, B-lymphocytes

1. Зверев В.В., Семенов Б.Ф., Хаитов Р.М. Вакцины и вакцинация: национальное руководство. Москва: ГЭОТАР-Медиа; 2011.

2. Онищенко Г.Г., Кожухов В.В. Сибирская язва: актуальные проблемы разработки и внедрения медицинских средств защиты. Москва: Медицина; 2010.

3. Лукьянова С.В., Кравец Е.В., Шкаруба Т.Т. Сибиреязвенные вакцины и перспективы их совершенствования. Инфекционные болезни. 2011; 9 (1): 51 - 56.

4. Bielinska A.U., Janczak K.W., Landers J.J., Makidon P, Sower L.E., Peterson J.W. et al. Mucosal immunization with a novel nanoemulsion-based recombinant anthrax protective antigen vaccine protects against Bacillus anthracis spore challenge. Infect. Immun. 2007; 75 (8): 4020 - 4029.

5. Cybulski Jr.R.J., Sanz P, O’Brien A.D. Anthrax vaccination strategies. Molecular Aspects of Medicine. 2009; 30 (6): 490 - 502.

6. Gauthier Y.P., Tournier J.N., Paucod J.C., Corre J.P, Mock M., Goossens P.L., Vidal D.R. Efficacy of vaccine based on protective antigen and killed spores against experimental inhalational anthrax. Infect. Immun. 2009; 77 (3): 1197 - 1207.

7. Xu L., Frucht D. M. Bacillus anthracis: a multi-faceted role for anthrax lethal toxin in thwarting host immune defenses. Int. J. Biochem. Cell. Biol. 2007; 39 (1): 20 - 24.

8. Микшис Н.И., Попова П.Ю., Кудрявцева О.М., Гончарова А.Ю., Попов Ю.А., Кутырев В.В. Иммуногенность протективного антигена, выделенного из аспорогенного рекомбинантного штамма B. anthracis. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунопрофилактики. 2011; 1: 44 - 48.

9. Kulshreshtha P, Aggarwal S., Jaiswal H., Bhatnagar R. S-layer homology motif is an immunogen and confers protection to mouse model against anthrax. Mol. Immunol. 2012; 50 (1-2): 18 - 25.

10. Uchida M., Harada T., Enkhtuya J., Kusumoto A., Kobayashi Y., Chiba S. et al. Protective effect of Bacillus anthracis surface protein EA1 against anthrax in mice. Biochem Biophys Res Commun. 2012; 421 (2): 323 - 328.

11. Дубровина В. И., Марков Е. Ю., Коновалова Ж. А., Юрьева О.В., Николаев В.Б., Лукьянова С.В. и др. Влияние антигенных препаратов Bacillus anthracis 34F2 Sterne в сочетании с нанокомпозитами на иммунный ответ экспериментальных животных. Эпидемиология и Вакцинопрофилактика. 2014; 3 (76): 92 - 96.

12. Дубровина В.И., Витязева С.А., Коновалова Ж.А., Старовойтова Т.П., Мухтургин Г.Б., Сухов Б.Г. и др. Сравнительная характеристика действия наноструктурированных аргенто-1-винил-1,2,4-триазола, аргентогалактоманнана и кобальтарабиногалактана на иммунную реакцию экспериментальных животных. Нанотехнологии и охрана здоровья. 2012; 3 (12): 31 - 38.

13. Дубровина В.И., Войткова В.В., Лукьянова С.В., Юрьева О.В., Николаев В.Б., Александрова Г.П. Результаты исследования действия антигенного препарата Bacillus anthracis 34F2 Sternе в сочетании с кобальт-арабиногалактаном на активацию и апоптоз клеток крови in vitro. Эпидемиология и Вакцинопрофилактика. 2014; 4 (77): 78 - 82.

14. Витязева С.А., Старовойтова Т.П., Дубровина В.И Сравнительная характеристика иммунного ответа макроорганизма при пероральном и парентеральном введении металлосодержащего нанобиокомпозита. Бюллетень Восточно-Сибирского научного центра Сибирского отделения Российской академии медицинских наук. 2012; 2 (84): 114 - 117.

15. Александрова Г.П., Медведева С.А., Грищенко Л.А., Сухов Б.Г., Трофимов Б.А. Способ получения наноразмерных металлических и металлоксидных частиц. Патент РФ № 2260500; 2005.

16. Rodriguez-Alba J.C., Moreno-Garcia M.E., Sandoval-Montes C., Rosales-Garcia V.H., Santos-Argumedo L. CD38 induces differentiation of immature transitional 2 B lymphocytes in the spleen. Blood. 2008; 111 (7): 3644 - 3652.

17. Sims G.P., Ettinger R., Shirota Y., Yarboro C.H., Illei G.G., Lipsky P.E. Identification and characterization of circulating human transitional B cells. Blood. 2005; 105 (11): 4390 - 4398.

18. Sandoval-Montes C., Santos-Argumedo L. CD38 is expressed selectively during the activation of a subset of mature T cells with reduced proliferation but improved potential to produce cytokines. J. Leukoc. Biol. 2005; 77: 513 - 521.

19. Hiepe F., Dorner T., Hauser A.E., Hoyer B.F., Mei H., Radbruch A. Long-lived autoreactive plasma cells drive persistent autoimmune inflammation. Nat mune disease. Nat. Rev. Rheumatol. 2009; 5: 433 - 441.

20. Yoshida T., Mei H., Dorner T., Hiepe F., Radbruch A., Fillatreau S. et al. Memory B and memory plasma cells. Immunol Rev. 2010; 237: 117 - 139

21. Querec T.D., Akondy R.S., Lee E.K., Cao W., Nakaya H.I., Teuwen D. et al. Systems biology approach predicts immunogenicity of the yellow fever vaccine in humans. Nat. Immunol. 2009; 10: 116 - 125.

22. He X. S., Sasaki S., Narvaez C. F., Zhang C., Liu H., Woo J.C. et al. Plamablast-derived polyclonal antibody response after in uenza vaccination. J. Immunol. Methods. 2011; 365: 67 - 75.

23. Wrammert J., Onlamoon N., Akondy R.S., Perng G.C., Polsrila K., Chandele A. et al. Rapid and massive virus speci c plasmablast responses during acute dengue virus infection in humans. J. Virol. 2012; 86: 2911 - 2918.

24. Lee F.E., Halliley J.L., Walsh E.E., Moscatiello A.P, Kmush B.L., Falsey A.R. et al. Circulating human antibody-secreting cells during vaccinations and respiratory viral infections are characterized by high speci city and lack of bystander effect. J. Immunol. 2011; 186: 5514 - 5521.

25. Benner R., Hijmans W., Haaijman J.J. The bone marrow: the major source of serum immunoglobulins, but still a neglected site of antibody formation. Clin. Exp. Immunol. 1981; 46: 1 - 8. Эпидемиология и Вакцинопрофилактика № 2 (81)/2015

26. Karlsson M.C., Guinamard R., Bolland S., Sankala M., Steinman R.M., Ravetch J.V. Macrophages control the retention and trafficking of B lymphocytes in the splenic marginal zone. J. Exp. Med. 2003; 198: 333 - 340.

27. Lu T.T., Cyster J.G. Integrin-mediated long-term B cell retention in the splenic marginal zone. Science. 2002; 297: 409 - 412.