Технология получения гипериммунных агглютинирующих сывороток против сальмонелл с использованием различных схем иммунизации и изучение биохимических, иммунологических показателей сывороток

Распространенность брюшного тифа и паратифов во всех странах мира является важной проблемой в сфере здравоохранения (а паратиф В, в том числе – для ветеринарии). Использование агглютинирующих диагностических сывороток позволит проводить серологическую идентификацию бактерий рода Salmonella в реакции агглютинации. Цель. Получение гипериммунных агглютинирующих сывороток против сальмонелл с использованием различных схем иммунизации и исследование биохимических, а также иммунологических показателей этих сывороток. Материалы и методы. В качестве материала для иммунизации (при получении гипериммунной антисыворотки) использовались нижеследующие штаммы сальмонелл: S. Typhi 002140/4446; S. typhi 003788/18, S. typhi 003909/135, S. typhi 003901/418, S. typhimurium 004453/11, S. Enteritidis 000571/867, S. paratyphi B 001150/34, S. anatum 001022/885, S. paratyphi А, 000652/217, Для иммунизации использовались корпускулярные антигены инактивированных штаммов сальмонелл. Проводили исследование гипериммунной сыворотки. Использовались бактериологические, биохимические, серологические и статистические методы. Результаты. В результате экспериментальных исследований был создан банк из 72 образцов диагностических сывороток для индикации сальмонелл. При исследовании поливалентных диагностических сывороток наблюдалось повышение уровня общего белка, глобулина, IgA и IgG после 1-, 2- и 3-й иммунизации (на 7-й, 14-й и 21-й день). Заключение. Учитывая, что показатели общего белка, альбумина, глобулина и IgG у экспериментальных животных достигали максимума на 28-й день после иммунизации, таким образом спустя 4-й недели можно получить сыворотки с высокой специфической активностью против разных штаммов сальмонелл.

1. Fonteneau L., Jourdan Da Silva N., Fabre L., et al. Multinational outbreak of travel-related Salmonella Chester infections in Europe, summers 2014 and 2015. Euro Surveill. 2017. Vol. 22, N7. P. 30463.

2. Als D., Radhakrishnan A., Arora P., et al. Global Trends in Typhoidal Salmonellosis: A Systematic Review. Am J Trop Med Hyg. 2018. Vol. 99, N3. P. 10–19.

3. Crump J.A., Sjölund-Karlsson M., Gordon M.A., et al. Epidemiology, Clinical Presentation, Laboratory Diagnosis, Antimicrobial Resistance, and Antimicrobial Management of Invasive Salmonella Infections. Clin Microbiol Rev. 2015. Vol. 28, N4. P. 901–937.

4. Kabwama S.N., Bulage L., Nsubuga F., et al. Correction to: A large and persistent outbreak of typhoid fever caused by consuming contaminated water and street-vended beverages: Kampala, Uganda, January - June 2015. BMC Public Health. 2017. Vol. 17, N1. P. 823.

5. Dyson Z.A., Klemm E.J., Palmer S., et al. Antibiotic Resistance and Typhoid. Clin Infect Dis. 2019. Vol. 68, N2. P. S165–S170.

6. Holt K.E., Phan M.D., Baker S., et al. Emergence of a globally dominant IncHI1 plasmid type associated with multiple drug resistant typhoid // PLoS Negl Trop Dis. 2011. Vol. 5, N7. P. e1245.

7. Mogasale V., Maskery B., Ochiai R.L., et al. Burden of typhoid fever in low-income and middle-income countries: a systematic, literature-based update with risk-factor adjustment. Lancet Glob Health. 2014. Vol. 2, N10. P. e570–e580.

8. Kinikar Anagha, Bhalerao Deepika, Roushani Shahriar, et al. The Easy and Early Diagnosis of Typhoid Fever. Journal of Clinical and Diagnostic Research. 2012. Vol. 6, N2. P. 198–199.